- Разное

У щуки паразиты: учимся искать паразитов в щуке

Содержание

учимся искать паразитов в щуке

Разобраться, есть ли в щуке описторхоз, при покупке рыбы на рынке или самостоятельном вылове нельзя. У заболевания имеется специфический возбудитель, который может передаваться как человеку, так и домашним животным.

Что собой представляет и как развивается описторхоз?

Иногда в мясе или икре рыбы при разделке обнаруживают тонких червяков (черви красного цвета, свернуты в спиральки). На основании этого хозяйки часто делают вывод, что щука описторхозная, и выбрасывают ее. Но определить наличие паразита непросто.

Описторхисы (кошачьи двуустки) — это мелкие черви-трематоды, которые образуют в мясе рыбы капсулу размером около 1 мм. При микроскопическом исследовании внутри капсулы обнаруживают личинку червя. Взрослой формы они достигают только в организме человека или животного. Размеры двуустки к этому времени могут достигать 8−19 мм.

Ихтиологи считают, что наиболее подвержены заражению пресноводные карповые рыбы (язь, лещ, карась, сазан, плотва и пр.). Личинки описторхисов попадают в их пищеварительный тракт из организма промежуточного хозяина (улитки-прудовика).

При употреблении в пищу зараженной рыбы может пострадать и человек. Симптомы и лечение описторхоза исследуются уже более 200 лет, изучено распространение возбудителя на территории России и в мире. Наиболее опасными считаются регионы Сибири и страны Юго-Восточной Азии.

Заболевание человека и животных относится к группе инвазий, которые вызывают гельминты (гельминтоз). Чаще всего паразит поражает печень человека и все органы гепатобилиарной системы, но есть случаи поражения нервной или дыхательной систем. Наличие возбудителей способно вызвать острое или хроническое заболевание — описторхоз. Симптомы болезни у человека проявляются в виде:

  • болей в правом подреберье;
  • тошноты и горечи во рту;
  • изжоги, частых болей в желудке;
  • болей в левой стороне нижней части грудной клетки, отдающих в плечо.

Симптомы напоминают признаки болезней желудка, панкреатита или гепатита, в острой форме сопровождаются лихорадкой, головными и суставными болями, которые продолжаются в течение 1−3 недель. Иногда проявления инвазии не выражены, и человек живет с паразитом, выделяя с фекалиями его яйца.

Описторхоз считают заболеванием, способным вызвать в пораженных органах онкологические патологии. При появлении первых признаков нужно обратиться к врачу и пройти курс терапии. Самостоятельное лечение с применением народных средств неэффективно, оно приводит только к переходу заболевания в запущенную форму или вызывает развитие осложнений.

Как распознать больную рыбу?

Визуально определить, есть ли в щуке описторхи, практически невозможно. Среди рыбаков распространено мнение, что у пораженной описторхозом рыбы на коже появляются мелкие кровоизлияния. Но правильно определить наличие паразитических опасных для человека червей можно только при лабораторном исследовании мяса подозрительного экземпляра: капсулы личинок слишком мелкие.

Какие паразиты бывают в щуке?

Наличие в щуке тонких красных червей не свидетельствует о ее заражении описторхозом. Чаще всего длинные (более 5 см) черви — это паразитическая нематода филометра, которая обитает только в теле рыбы, в области головы и плавников. Она не опасна для человека.

Эустронгилидес похож на филометру, поражает всех пресноводных рыб. Его можно обнаружить в виде округлых капсул в молоках, икре, мясе окуней, щук и даже благородных пород (осетровых или лососевых).

Есть и другие микроскопические гельминты, которые паразитируют в щуке, а у человека вызывают следующие заболевания:

  1. Нанофиетоз. Личинки живут в коже рыб любых пород. Поражают ЖКТ людей и домашних животных.
  2. Анизакидоз. Паразиты обитают в мышечной ткани и ЖКТ щук и других рыб. У человека выражается в заболеваниях желудка, лихорадке, сильных аллергических реакциях.
  3. Клонорхоз. Вызывается китайской двуусткой, поражает разные виды рыб, опасен для человека. Проявления напоминают описторхоз.

Если щука обитала в водоеме, где есть карповые рыбы, то она может быть заражена и описторхозом. Кошачья двуустка может попасть в кишечник хищницы вместе с зараженной жертвой. Несмотря на утверждения рыбаков о том, что описторхоз в щуке никогда не встречается, заразиться им можно и при употреблении этой рыбы.

Можно ли употреблять в пищу больную щуку?

Если паразиты в щуке обнаружены в жабрах, ползают внутри брюшной полости, то это, скорее всего, безопасная филометра. Есть зараженную этими червями щуку не следует. Ее мясо пропитывается токсинами, которые выделяет паразит, теряет вкус и становится несъедобным. Рыбу можно тщательно проварить и скормить домашним животным.

Обнаружив в мышечных тканях округлые плотные шарики размером около 5 мм, можно сделать вывод о зараженности щуки эустроногилидесом. Внутри капсулы можно найти червяков толщиной со швейную нить, длиной около 5 см. При небольшой степени заражения мясо можно употреблять в пищу после удаления капсул и тщательной кулинарной обработки.

Заметить личинки описторхов и определить, есть ли опасные глисты в щуке, нельзя. Чтобы обезопасить себя от случайного заражения, нужно соблюдать несколько простых правил.

Как не заразиться паразитами?

На вопрос о том, болеет ли щука описторхозом, и рыбаки, и ученые дадут отрицательный ответ. Но в пищеварительном тракте у щук могут остаться личинки, которые попали туда при поедании зараженных карповых. При случайном повреждении стенок кишечника щуки личинки проникнут и в мясо. Кроме описторхоза, рыба может быть заражена гельминтами, представляющими опасность для человека.

Обрабатывая сырую тушку, желательно надеть тонкие резиновые перчатки. Во время чистки и разделывания не следует курить, прикасаться к губам или готовым пищевым продуктам (хлебу и пр.). После окончания работы с сырой щукой тщательно вымыть руки, нож, разделочную доску.

Чтобы избежать заражения и развития заболевания в человеческом организме, нужно правильно готовить щуку:

  1. Засол проводят, обильно пересыпая тушки солью. Кристаллы должны попасть и внутрь брюшка щук. Крупные экземпляры нужно распластать, разрезая вдоль позвоночника. Срок посола — не менее 5−7 суток.
  2. Вяление щучьих тушек можно производить после тщательного просола. Чтобы удалить излишки соли, рыбу промывают и вымачивают.
  3. Замораживать рыбу нужно при температуре не выше -28°С. После промораживания в течение 20 суток она становится безопасной, личинки большинства паразитов гибнут.
  4. Варить свежую рыбу нужно не менее 20 минут. Чтобы мясо хорошо проварилось, тушки нарезают кусками по 150−200 г.
  5. Жарят свежую щуку в течение 20−25 минут, нарезая кусками толщиной не более 5 см. Замороженную рыбу нужно предварительно полностью разморозить, чтобы она при жарке прогрелась равномерно.
  6. Готовить запеченную рыбу или подвергать ее горячему копчению нужно в течение 20−30 минут, добиваясь отставания мяса от костей.
  7. Пироги с щукой выпекать в течение 40−60 минут.

Чтобы быть полностью уверенным в том, что вяленая или копченая щука безопасна, лучше всего покупать свежую рыбу и готовить закуски самостоятельно. Употреблять блюда из сырой рыбы нельзя.

Чем можно заразится от щуки, окуня, налима, плотвы и других рыб

Чем можно заразится от щуки, окуня, налима, плотвы и других рыб. Это нужно знать! Как говорится, лечится сегодня много болезней, но оно Вам нужно?

Начиная разговор о болезнях рыб, нельзя не сказать о таком заболевании, которое опасно и для животных, и для человека, как

дифиллоботриоз. Да, так уж сложилось, что некоторые заболевания рыбы не опасны для человека, но это не относится к данной патологии, поэтому, знать о некоторых инфекционных и инвазионных заболеваниях рыбы не только желательно, но и нужно, дабы не стать жертвой легкомысленного отношения к своему здоровью. Как говорится, лечится сегодня много болезней, но оно Вам нужно?

Развитие возбудителя дифиллоботриоза

Итак, сначала очень коротко о цикле развития возбудителя дифиллоботриоза:

Яйцо попадают в окружающую среду, если они попадают в воду, образуется личинка, которая может быть употреблена в пишу водными микроскопическим обитателями — различными представителями ракообразных.

В теле первого промежуточного хозяина личинка развивается, после чего она попадает в тело рыбы, если последняя позарится на зараженного циклопа, например. Щука может атаковать уже зараженную рыбу, после чего она становится носителем личиночной формы заболевания.

Ну и, это уже почти финал — если такую рыбу вылавливает рыбак, плохо её обрабатывает и употребляет в пищу, то через некоторое время цикл замыкается, личинка превращается в половозрелую форму гельминта, и человек начинает выделять во внешнюю среду яйца, т. е. становится распространителем глистной инвазии.

Помимо человека болеют плотоядные: как домашние, так и дикие. Естественно, заразившись, через некоторое время состояние человека ухудшается, что имеет массу клинических признаков: сначала течение может носить практически бессимптомный характер, вплоть до расстройства пищеварительного тракта, ухудшения показателей крови и т. д. В данной ситуации помощь может оказать только врач, после детального клинического исследования больного, микроскопии материала и анамнеза.

Какие рыбы могут быть носителями дифиллоботриоза?

Теперь самое интересное: какие же рыбы могут быть носителями личиночной стадии дифиллоботриоза?

Это и щука, и окунь, налим, плотва и другие виды. Как видите, в основном — это все те представители любительской рыбалки, по которым, в основном, чаще всего и ведется рыбалка. Риск заразиться высок, особенно если не соблюдаются гигиенические нормы.

Клиническая картина заболевания

В организме человека лентец может жить очень долго — десятилетия, доставляя человека массу неприятностей. Повторимся, клиническая картина носит разнообразный характер, поэтому если со стороны пищеварительного тракта у человека наблюдаются такие симптомы, как ухудшение пищеварения, боли, иногда вздутие, тошнота и т. д., и ко всему прочему в анамнезе есть случаи употребления в пищу речной рыбы (например, щуки, щучьей икры, окуня, налима), можно предположить данный гельминтоз.

Что можно посоветовать?

Первое — соблюдать личную гигиену, а во-вторых — хорошо обрабатывать рыбу перед употреблением в пищу: проваривание, прожарка, длительное замораживание и вяление.

Конкретных цифр мы не приводим, так как данную информацию лучше всего получить из уст врача или в специальной литературе. Но, знать о таком заболевании и потенциальной опасности, нужно… это все к тому, что многие рыбаки употребляют щучью икру чуть ли не в сыром виде, кто-то лишь слегка провяливает рыбу. Помните, до заболевания всего один шаг, особенно если в водоем попадают сточные воды, или культура населения оставляет желать лучшего (фекалии попадают в воду).

Удачи Вам и всего хорошего, не болейте.

можно ли заразиться паразитом от зубастой?

На чтение 5 мин Просмотров 360 Опубликовано

Есть ли в щуке описторхоз? Более плотно подойти к вопросу заставил комментарий одного из читателей блога. Речь в статье шла о засолке хищницы. «А причём тут щука и описторхоз? Описторхи на щуке не паразитируют. Другое дело широкий лентец, но эта зверушка уже не так страшна.»

Действительно, часто встречается информация, что хищнице не свойственно заражаться описторхозом. Быть переносчиком заболевания удел исключительно рыб семейства Карповых. Елец, плотва, язь, лещ, густера. Довод к этому прилагается следующий. Дескать, в кишечном тракте щуки содержится доза ферментов, напрочь убивающая паразита.

А так ли все на самом деле? Давайте вспомним, кто является возбудителем заболевания и его жизненный цикл. А потом уже разберемся, бывает ли у щуки описторхоз.

Описторхоз, что это?

Описторхоз — заболевание внутренних органов млекопитающих (собаки, кошки, пушные зверушки, человек), вызываемое плоским червем семейства Opisthorchidae. В частности, по нашим регионам это Opistorchis felineus, или сосальщик кошачья двуустка. Паразит поражает желчные ходы печени, желчный пузырь, протоки поджелудочной железы. Однако, прежде, чем сосальщик попадет внутрь своего конечного носителя, червь паразитирует на моллюсках и рыбе.

Кратко жизненный цикл кошачьей двуустки выглядит следующим образом.

Яйца сосальщика попадают в воду. Для прохождения своей первой стадии они обязаны быть съедены своим промежуточным хозяином — пресноводным моллюском битинией Bithinia leachi. В кишечнике битинии внешняя оболочка яиц открывается и из них выходят мирацидии. Далее паразит внедряется в ткани внутренних органов моллюска и через некоторое время превращается в спороцисту. Этот промежуток времени может длиться до полугода.

Спороциста порождает очередные стадии — редий, а затем циркарий.

Циркарии выходят наружу из тела улитки, где перемещаются в воде при помощи плавательной мембраны (хвостика). Именно эта стадия развития двуустки поражает рыбу.

В рыбе описторхи внедряются в мышцы, покрываются оболочкой и превращаются в метациркарию. На конечном своем этапе развития паразит должен попасть в тело млекопитающих. Последние становятся разносчиками яиц Opistorchis felineus.

Может ли щука заразиться описторхозом съев больную рыбу? Скорее всего нет. Паразит в теле рыбы находится в состоянии покоя. Для продолжения жизненного цикла ему требуется попасть в тело млекопитающих. Природу не обманешь.

А как паразит попадает в тело рыбы? Логично предположить, что рыба просто съедает паразита. Но это не так. Есть лучший путь — покровы тела (Цыганова Н.А., Дрождина Е.П. «Общая паразитология»). При чем, это самый оптимальное направление:

  • Нет агрессивной кислотной среды пищеварительной системы.
  • Оптимальное значение растворенного кислорода.
  • Близко расположенная конечная станция — мышцы.

Следуя такому пояснению, как ответить — можно ли заразиться описторхозом от щуки? Конечно можно. Любая пресноводная рыба способна быть переносчиком описторхов к человеку.

Тогда почему так мало информации, что щука болеет описторхозом? Почему в 99% статей указано, что переносчики заболевания только карповые рыбы?

Вопрос на засыпку. Можно ли заразиться описторхозом от кошки или собаки дома?

Почему мало информации, что щука болеет описторхозом

Выскажу сугубо личное мнение.

Во-первых, целенаправленными научными исследованиями (есть ли в щуке описторхоз), очевидно, никто не занимается. Ища в интернете эту конкретную информацию ничего не нашел.

Есть сведения по локальным водоемам, где паразитологи изучали заболеваемость рыб. И когда приводится список, какие рыбы болеют описторхозом, то если щука и включена, то количество исследуемых особей совершенно незначительное. Основную массу составляют стайные карповые рыбы.

Во-вторых, штудируя попавшиеся на глаза дипломные и кандидатские работы, заметил, что авторы исследований приводят вот какой интересный факт. В некоторых водоемах, где присутствуют все промежуточные хозяева описторхов, случаев массовых заболеваний нет. Это объясняется наличием неблагоприятных для паразита гидротехнических показателей воды и паводковым режимом водоемов (Шибитов С.К. 2013 «Описторхоз плотоядных животных в условиях Западной Сибири: распространение, патогенез, диагностика, меры борьбы»).

В-третьих, будем говорить честно. Основная масса статей на сайтах пишется не паразитологами. Это либо заказной рерайт имеющихся на других сайтах статей, либо ОБС. Отсюда и малая информативность темы.

Если есть вам, уважаемые читатели, что добавить, то не стесняйтесь. Излагайте в комментариях.

От себя добавлю, что щука и описторхоз — до конца не изученная тема. Не стоит полагать, что дифиллоботриоз — единственная гадость, с которой нам придется встретиться, приготавливая щуку. Есть нормы и правила обезопасить себя от заразы, почему бы и не воспользоваться?

При какой температуре погибает описторхоз в рыбе: при заморозке, варке, жарке

Описторхи — твари биологические. С повышением температуры, воздействием солевых растворов описторхоз в рыбе погибает. Рекомендации, гарантирующие обеззараживание и безбоязненное поедание рыбного продукта, простые.

Согласен, что вкусовые качества приготовленной рыбы ухудшаются. Однако, что лучше — потерять немного во вкусе или завести «домашнее животное»?

При какой температуре описторхоз умирает в рыбе

Замораживание в домашних холодильниках не обеспечивает обеззараживания рыбы.

Гибнут личинки описторхоза при соблюдении следующих условий заморозки:

  • Температура -40 через 7 часов.
  • При -35 через 14 часов.
  • 32 часа придется морозить при -28.

При варке в течении 15-20 минут после закипания.

При жарке небольшими кусочками с закрытой крышкой в течение 15-20 мин.

Рыбные пироги следует выпекать не менее часа.

Нормативы засолки и вяления

Засолка 2 недели при концентрации 2 кг соли на 10 кг рыбы.

При вялении:

  • По вкусу, предварительно выдержав рыбу 2 недели из расчета — 2 кг соли на 10 кг рыбы.
  • 3 недели, предварительно посолив в течение 3 дней из прописанного выше расчета.

Оставшиеся меры предосторожности:

  • Не употреблять строганину, «хе», парную.
  • Не пробовать на вкус рыбный фарш.
  • Капитально обрабатывать инвентарь после разделки.

Даже если уверены, что щука и описторхоз не совместимы — лучше перестраховаться.

НХНЧ

есть ли в щуке возбудитель заболевания

Есть ли у щуки описторхоз? Этот вопрос интересует многих любителей рыбных блюд. Ведь получить паразитарную инвазию через пищу можно очень легко. Щука — это полезная и вкусная рыба. Однако обитатели пресных водоемов очень часто бывают заражены опасными видами гельминтов. Можно ли инфицироваться при употреблении блюд из щуки? Попробуем разобраться.

Что это такое

Прежде чем ответить на вопрос: «Болеет ли щука описторхозом?», необходимо понять механизм развития этой опасной глистной инвазии.

Описторхоз — это тяжелое паразитарное заболевание, протекающее с поражением печени, желчного пузыря и поджелудочной железы. Его возбудителем является кошачья двуустка (печеночный сосальщик). Это гельминт, относящийся к классу плоских червей. На теле глиста имеются специальные присоски, с помощью которых он прикрепляется к внутренним органам хозяина.

Описторхозом страдают не только рыбы и люди, но и млекопитающие. Печеночным сосальщиком могут быть заражены бродячие кошки и собаки, обитающие вблизи водоемов, а также коварство этой патологии заключается в том, что у человека инвазия может очень долгое время протекать без явных проявлений. Симптомы описторхоза появляются на поздней стадии болезни, когда возникает тяжелое расстройство функции внутренних органов.

Жизненный цикл

Чтобы разобраться — бывает ли у щуки описторхоз, необходимо знать как размножается и развивается кошачья двуустка. Этот червь проходит довольно сложный жизненный цикл, в течение которого гельминт меняет своих хозяев:

  • Зараженные млекопитающие и люди выделяют яйца паразита вместе с фекалиями.
  • Затем яйца попадают в водоемы. Они проникают внутрь организма моллюсков и превращаются в личинки (церкарии). Такая стадия развития гельминта не представляет опасности для человека.
  • Многие виды рыб питаются моллюсками и заражаются при этом описторхозом. В их организме личинка превращается в метацеркарий. Именно на этой стадии гельминт становится опасным для человека.
  • Люди заражаются при употреблении в пищу рыбы с описторхозом. В человеческом организме личинка становится взрослым половозрелым червем и начинает паразитировать на внутренних органах. Больные люди выделяют яйца вместе с калом. После этого жизненный цикл гельминта вновь повторяется.

Описторхоз может протекать бессимптомно в течение многих лет. Затем у человека возникает кожный зуд, слабость, расстройства кишечника, боли в правом боку под ребрами. Это признаки поражения печени и поджелудочной железы.

Пути заражения

Вопреки распространенному ошибочному мнению, человек не может заразиться описторхозом от больных кошек и собак. Также люди не могут получить инвазию, случайно заглотнув воду из пруда или реки. Единственный путь заражения человека кошачьей двуусткой — это употребление в пищу инфицированной и плохо обработанной рыбы.

Болеют ли щука и окунь описторхозом? Этой инвазии в большей степени подвержены рыбы семейства Карповых. Однако и щука, и окунь относятся к хищникам. Они поедают моллюсков и мелких рыбок и вполне могут заразиться описторхозом.

Часто рыбаки задают вопрос: «Есть ли описторхоз у речной щуки?». Заразиться личинками кошачьей двуустки может любая пресноводная рыба, питающаяся моллюсками. Инвазия не встречается только у обитателей морских вод. Этой болезни одинаково подвержены как прудовые, так и речные щуки.

Распространенность заболевания

В некоторых регионах России наблюдается высокая заболеваемость описторхозом. Большая степень заражения рыб и моллюсков отмечается в бассейнах следующих рек:

  • Северной Двины.
  • Камы.
  • Волги.
  • Енисея.
  • Бирюсы.
  • Оби.
  • Иртыша.
  • Урала.
  • Днепра.
  • Дона.

Эти реки считаются эпидемиологически неблагополучными по описторхозу. При употреблении рыбы, выловленной в вышеперечисленных водоемах, нужно соблюдать особую осторожность.

Признаки инвазии у рыбы

Чтобы понять, есть ли у щуки описторхоз, нужно внимательно присмотреться к внешнему виду рыбы. На заражение личинками могут указывать следующие признаки:

  • мутность и чрезмерная сухость глаз;
  • слишком легкое отхождение чешуи;
  • слизь на теле;
  • вздутие брюшной области;
  • неприятный запах от внутренностей при разделке рыбы;
  • болотный цвет жабр.

Мышцы зараженных особей становятся чрезмерно мягкими. Можно попробовать нажать на тело рыбы. Если на чешуе остается глубокая ямка, то, вероятнее всего, щука заражена личинками.

Можно ли невооруженным глазом увидеть в рыбе возбудителя описторхоза? Где бывает наибольшее скопление личинок? Метацеркарии локализуются в мышцах и подкожной клетчатке рыбы. Однако рассмотреть их без микроскопа невозможно, так как личинки имеют чрезвычайно малые размеры. Поэтому о заражении рыбы можно судить лишь по косвенным признакам.

Как избавиться от личинок в рыбе во время ее приготовления? Рассмотрим этот вопрос более подробно.

Термообработка

Есть ли у щук описторхоз и возможно ли им заразиться, если рыба была тщательно отварена или обжарена? Такой продукт может быть опасен, если термообработка была недостаточной. Личинки кошачьей двуустки погибают только при длительном воздействии высоких температур.

Чтобы избежать заражения, нужно соблюдать следующие правила приготовления рыбы:

  1. Щуку перед обжариванием нужно порезать маленькими кусочками. Это обеспечит равномерную термообработку и поможет полностью избавиться от живых личинок. Жарить рыбу нужно не менее 20-30 минут. Этого времени достаточно для уничтожения метацеркариев. Во время обжаривания щуки сковороду нужно прикрывать крышкой.
  2. При варке рыбу нужно кипятить не менее 30 минут. В течение этого времени все паразиты в мышцах погибают. Крупную щуку нужно порезать дольками перед отвариванием.
  3. Не рекомендуется запекать целую тушку щуки. Лучше предварительно порезать ее на кусочки. Рыбу следует держать в разогретой духовке не менее 1 часа.
  4. Самым безопасным способом приготовления щуки является тушение. Рыбу нужно держать на слабом огне до тех пор, пока ее кости не станут мягкими. Только в этом случае можно быть уверенным в полном уничтожении личинок.

Икра

Может ли находиться возбудитель описторхоза в икре щуки? Такой продукт тоже может быть заражен личинками. Метацеркарии способны проникать из мышц рыбы в икринки, а затем передаваться человеку.

Чтобы уничтожить паразитов в щучьей икре, необходимо тщательно проводить засолку продукта. Не стоит пользоваться быстрыми рецептами приготовления. В икре-«пятиминутке» может оставаться огромное количество живых личинок двуустки. Нужно класть в банку с продуктом достаточное количество соли — около 2 столовых ложек на емкость 800 мл. Засоленную икру нужно выдерживать в холодильнике не менее 5 — 7 дней перед употреблением.

Перед приготовлением икру рекомендуется проварить 2 минуты в соленом кипятке или выдержать на холоде 5-10 дней при температуре от -4 до -12 градусов. Это тоже поможет избавиться от личинок.

Соление

При нарушении правильной технологии засолки в щуке могут оставаться личинки двуустки. При таком способе приготовления очень важно соблюдать правильные пропорции продуктов. На 10 кг щуки потребуется 2 кг соли.

Рыбу нужно выложить послойно и обильно пересыпать солью. Мелкую щуку необходимо выдержать в рассоле около 5-7 суток, а крупную — не менее 14 дней. Только в этом случае продукт будет безопасен.

Мороженая рыба

Есть ли у щуки описторхоз, если рыба была хорошо заморожена? Личинки паразита довольно устойчивы к воздействию низких температур. Чтобы избавиться от метацеркариев, необходимо держать рыбу на холоде не менее 18-20 дней. При этом температура должна быть не выше -12 градусов. При морозе -30 градусов щуку достаточно выдержать около 3 суток. Однако даже после такой подготовки рыбу нужно подвергать тщательной обработке.

Ни в коем случае нельзя употреблять в пищу строганину — замороженную сырую рыбу, нарезанную тонкими дольками. Это очень опасный продукт. Пребывание рыбы на холоде далеко не всегда приводит к гибели паразитов.

Копчение и вяление

Возбудитель описторхоза в щуке может сохраняться при холодном копчении. Поэтому этот вид рыбы лучше вялить. Перед обработкой щуку нужно хорошо выморозить, засолить и выдержать в течение 3 суток. Только после этого можно приступить к вялению, которое должно длиться не менее 20 дней.

При приготовлении деликатесов из щуки следует отдавать предпочтение горячему способу копчения. Такая обработка рыбы надежно уничтожает личинок.

Другие виды паразитов у щуки

Кошачья двуустка — далеко не единственный щучий паразит. В хищных видах пресноводных рыб могут также находиться следующие гельминты:

  1. Китайская двуустка. Этот глист также относится к группе сосальщиков. Он вызывает заболевание — клонорхоз. Признаки инвазии очень напоминают проявления описторхоза. Паразит локализуется в печени. Это приводит к сильному увеличению органа, болям с правой стороны под ребрами и кожному зуду.
  2. Широкий лентец. Этот ленточный червь может достигать размеров до 10-12 м. Он паразитирует в кишечнике и вызывает заболевание — дифиллоботриоз. Инвазия сопровождается резким похудением, диспепсическими явлениями и слабостью.
  3. Анизакида. Это очень опасный вид паразита. Он проникает в организм человека при поедании плохо обработанной рыбы. Анизакидоз сопровождается тяжелыми расстройствами ЖКТ и аллергическими реакциями. На сегодняшний день не разработано эффективного лечения этой инвазии.
  4. Нанофиетус. Этот плоский червь может попасть в организм не только через пищу. Его личинки могут оставаться на руках человека после разделки рыбы. Нанофиетус вызывает воспаление и раздражение кишечника. Однако через 1-2 месяца обычно наступает самоизлечение, так как жизненный цикл гельминта очень короткий, а размножаться в организме человека он не способен.

Описторхоз у других видов рыб

Как уже упоминалось, любые виды пресноводных рыб могут быть заражены описторхозом. Инвазия чаще всего встречается у представителей семейства карповых:

  • карасей;
  • лещей;
  • карпов;
  • сазанов.

Также кошачьей двуусткой нередко бывает заражены окуни, язи, ерши и пелядь. Если вышеперечисленные виды рыб обитают в эпидемиологически неблагополучных водоемах, то в 90 % случаев у них имеется описторхоз.

Как избежать инвазии

Единственным способом профилактики описторхоза у человека является тщательная обработка и правильное приготовление щуки. Если рыба выглядит больной, то лучше отказаться от ее поедания.

Также необходимо тщательно промывать разделочную доску и посуду, в которой находилась сырая рыба. Личинки кошачьей двуустки могут сохраняться на кухонных принадлежностях.

Ни в коем случае нельзя кормить сырой пресноводной рыбой домашних питомцев. Как уже упоминалось, человек не может заразиться личинками двуустки от других млекопитающих. Однако у кошек и собак описторхоз протекает очень тяжело и нередко заканчивается гибелью животного. Скармливая питомцу сырую рыбу, вы подвергаете его здоровье и жизнь серьезной опасности.

Описторхоз. Опасность в рыбе | ЗДОРОВЬЕ

Существует ли иммунитет к описторхозу? Как происходит заражение паразитами? На эти и другие вопросы корреспондентам «АиФ – Югра» ответил доктор медицинских наук, профессор БУ ВО «Ханты-Мансийская государственная медицинская академия» Зуевский Владислав Петрович.

Корреспондент АиФ-Югра: – Как происходит заражение описторхозом?

Владислав Зуевский: Это действительно актуальная тема для нашего округа, ведь Югра является центром по заболеваемости описторхозом. В целом по Западной Сибири около 500 тысяч пациентов, зараженных паразитом. В Югре ежегодно подвергаются заражению не менее 1000 человек. Заболевание характеризуется поражением протоков печени, желчного пузыря и протоков поджелудочной железы. Заразиться несложно, причиной тому – рыба, которую ловят в здешних местах и употребляют в пищу, нарушая технологию приготовления.

Описторхоз – это заболевание, вызываемое плоскими червями, паразитами из рода «Opisthorchis». Заболевание распространено в России, Казахстане, Украине и странах Юго-Восточной Азии таких как: Таиланд, Малайзия, Филиппины, Вьетнам.

Рыба эта карповых пород: язь, чебак, елец, пескарь, карась. Некоторые породы рыб не подвержены заражению описторхозом: муксун, щёкур, осётр, щука. Хотя щука заражена другим гельминтом – дифиллоботриозом, широкий лентец паразитирует в кишечнике человека. При лечении данных заболеваний нужно помнить, что все лекарства действуют не только на паразита, но и на весь организм, особенно на печень. Любое такое лечение – это удар по печени.

Язь, чебак, елец, пескарь, карась — носители описторха Фото: АиФ/ Дмитрий Даневич

Описторхозом могут быть заражены и животные, те, которые питаются рыбой. Визуально по рыбе определить заражена она или нет – не получится. Есть специальные нормы обработки заражённой рыбы, её вымораживают при –28 градусов по Цельсию не менее 2-х суток. Жарить и варить рыбу нужно не менее 20 минут, рыбный пирог готовить не менее часа. «Малосолая» рыба часто является источником заражения, поэтому солить крупную рыбу в крепком посоле (на 1 кг рыбы 200 г соли) следует не менее 40 суток.

– Каковы признаки заражения описторхозом и способы выявления заболевания?

– Существуют различные формы развития заболевания. Это может быть нарушение работы желудочно–кишечного тракта. Появляется тошнота, рвота, у больного поднимается температура, возникают боли в различных частях тела. Есть ещё один важный признак – повышение количества эозинофильных лейкоцитов в крови, но это при всех паразитозах. Основные способы диагностики — это исследования кала на нахождения в организме человека яиц паразита, исследование крови на антитела к описторхам, также применяют исследование желчи на яйца паразита. Желчь получают путем дуоденального зондирования.

– Как происходит лечение?

– Схема лечения описторхоза у взрослых и детей начинается с подготовки организма. Этот этап важен, так как все противогельминтные препараты токсичны. Они могут вызывать отравление организма и нарушить работу органов желудочно-кишечного тракта. В основном лечат описторхоз  празиквантелем, бильтрицидом или азиноксом. Нужно помнить, что народные средства при лечении заболевания неэффективны. Были придуманы натуральные препараты на основе осиновой коры, но такое лечение дало слабоположительный результат.

– Существует мнение, что у коренных народов Севера есть иммунитет к описторхозу.

– Иммунитета у любого человека к этому заболеванию нет. Считалось, что это болезнь животных, в 1884 году паразит был обнаружен итальянским учёным в печени кошки, но 3 апреля 1891 года профессор патанатомии Константин Николаевич Виноградов при вскрытии обнаружил «сосальщика» в печени человека, ему было дано название сибирской двуустки, заболевание получило название «описторхоз». Аборигены Севера, в частности ханты и манси, также подвергались заражению, но с течением времени организм коренных жителей адаптировался и не так остро реагировал на болезнь. Люди могли быть носителями паразита и не знать о нём.

– Как появляются раковые клетки при заражении описторхозом?

– Паразит питается эпителием, кровью и выделяет продукты жизнедеятельности. Поддерживается постоянное воспаление и таким образом создается благоприятная среда для развития злокачественных образований.

– Владислав Петрович, учитывая вышесказанное про описторхоз, может стоит вообще отказаться от употребления рыбы карповых пород?

– Нет, такой рекомендации я дать не могу, речная рыба очень полезна для организма, она малокалорийна, содержит много полезных микроэлементов, таких как кальций, магний, железо, фтор, и витамин РР. Надо только правильно приготовить рыбу, и вы получите полезный и вкусный продукт!

Зуевский Владислав Петрович закончил Тюменский государственный медицинский институт. С 6-го курса рабтал на кафедре патологической анатомии в качестве лаборанта-исследователя. Занимался патологической анатомией, окончил аспирантуру, проводил исследования в области экспериментального описторхоза, защитил кандидатскую диссертацию. В 1994 году в Сургуте на медико-биологическом факультете возглавил кафедру морфологии. В 1996 году защитил докторскую диссертацию, которая была посвящена проблеме описторхоза и развития, на этом фоне рака желудка. Работал в Сургуте тринадцать лет. Был главным специалистом по патологической анатомии города. Трудился проректором по научной работе, был председателем диссертационного совета по экологии. Стоял у истоков создания Научно-исследовательского института «Природопользования и экологии Севера». Затем переехал в город Ханты-Мансийск. Сейчас заведует кафедрой биологии и микробиологии в Ханты-Мансийской медицинской академии, некоторое время совмещал с работой на кафедре патологической анатомии здесь же. Занимается исследованиями в области нефробиопсии. Данный метод достаточно современный, сложный и по всей Тюменской области используется только у нас в Ханты-Мансийске.

Смотрите также:

Специалисты рассказали об опасных паразитах в речной рыбе и раках

Речные рыба и раки могут быть заражены опасными паразитами. Они гибнут лишь при определенной обработке. то есть если не доварил, не дожарил, не докоптил — то легко можно заразиться серьезной инфекцией.  Какие паразиты представляют опасность, рассказали в Роскачестве. 

Чем заражают паразиты?  

Анизакидоз — наиболее опасное заболевание, которое поражает желудочно-кишечный тракт. У зараженного человека могут развиться язвы стенок желудка или тонкого кишечника. Человек заражается при употреблении в пищу сырой или недостаточно термически обработанной рыбы и водных беспозвоночных. Инкубационный период после заражения длиться одну-две недели. Личинки нематод, которые вызывают анизакидоз, могут присутствовать в 20 семействах промысловых морских рыб, ракообразных и моллюсков. В теле рыбы иногда видны в форме плоской спирали.  

Этих паразитов можно встретить в нототении, скумбрии, тунце, сардине, кете, горбуше, сельди, треске, салаке, ставриде, пикше, морском окуне, камбале, рыбе-сабле, кальмаре, осьминоге, креветке и моллюске. 

Описторхоз поражает печень и желчевыводящие пути. Человек заражается во время употребления в пищу рыбы семейства карповых. Такой вид рыбы водится в водоемах Северо-Западного региона. Увидеть паразита, вызывающего описторхоз невооруженным глазом невозможно из-за его небольшого размера. 

Этот паразит поражает такую рыбу, как язь, лещ, елец, линь, жерех, плотва, уклея, красноперка, гольян, подуст и другие.  

Дифиллоботриоз протекает с поражением желудочно-кишечного тракта и часто сопровождается анемией. Человек заражается этим паразитом от рыбы, обитающей в пресноводных водоёмах. Заметить паразитов, вызывающих дифиллоботриоз также невозможно из-за его микроскопического размера. В какой рыбе встречаются? Судак, щука, налим, окунь, ерш и другие. Личинки этого паразита часто имеются и в морской рыбе: кета, тихоокеанский лосось, горбуша и другие.  

Парагонимоз — паразитарное заболевание, вызываемое лёгочным сосальщиком. Происходит при употреблении в пищу раков и крабов, не прошедших достаточную термическую обработку. Легочный сосальщик поражает легкие, мышцы, иногда головной мозг. 

Илья Гордеев, кандидат биологических наук, старший научный сотрудник ФГБНУ «ВНИРО»:

«Заражение человека происходит при поедании сырой или недостаточно термически обработанной рыбы, содержащей живые личинки. Симптомы заражения, как правило, проявляются в виде пищевых расстройств, ухудшения общего состояния, снижения массы тела. Клинические признаки при заражении могут долгое время отсутствовать или иметь нехарактерные проявления. Зачастую клиническая картина при паразитарных заболеваниях проявляется симптомами заболеваний желудочно-кишечного тракта, таких как гастрит, панкреатит, холецистит и другие. На сегодня разработано множество препаратов, позволяющих излечиться от гельминтов». 

Анастасия Согрина, кандидат биологических наук, старший научный сотрудник ФГБНУ «ВНИРО»:

 «Согласно СанПин 3.2.3215-14 «Профилактика паразитарных болезней на территории Российской Федерации» обеззараживание рыбы и рыбной продукции осуществляется посредством замораживания, посола и тепловой обработки.    

Для уничтожения личинок нематод (анизакисов) рыбу необходимо выдержать в течение 14 суток в условиях стандартной морозильной камеры при температуре минус 18–20 ºС.  Для уничтожения личинок трематод (описторхиды и др.) необходимо выдержать рыбу или рыбную продукцию при температуре минус 28 ºС не менее 32 часов. Личинки цестод погибают при минус 12 ºС в течение 72 часов. Для обеззараживания беспозвоночных, в частности раков, применяют тепловую обработку».

Как самому избежать заражения? 

Специалисты Роскачества не рекомендуют покупать рыбу и раков на дорогах, в частных домах или с рук возле рек и озер. Нужно отдавать предпочтение продукции с предприятий. 
 
При разделке свежей рыбы или раков дома использовать отдельную посуду и нож. После разделки обработать посуду при помощи дезинфицирующих средств. 

Перед употреблением рыбу необходимо хорошо прожаривать, проваривать, просаливать. Например, любители суши очень рискуют своим здоровьем. 

Помните, что вяленая, копченая, слабосоленая рыба, приготовленная в кустарных условиях без соблюдения специальной технологии, все еще может содержать паразитов. Берегите своих домашних животных — кошки и собаки также могут заразиться паразитами от сырой или плохо приготовленной рыбы или заразить впоследствии вас, — предупреждают в Роскачестве.  

Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter

Тобольские учёные устроили медосмотр югорской рыбе | Общество

03.09.2020 18:32

#Общество

#Белоярский район

Автор: Сергей Коробков, Светлана Копёнкина, при поддержке телекомпании «Квадрат», фото – ОТРК «Югра»

Читать новости Югра ТВ в


А здорова ли рыба? В Белоярский район приехали биологи из соседнего региона, чтобы изучить обитателей местных озёр — Нумто и Светлый. Улов учёных богат — щука, окунь, пелядь. И всех нужно проверить на наличие паразитов.

Поймали щуку, но желания не загадали. Ведь цели у биологов совсем иные – не сказочные, а научные. Рыба нужна для исследований.

Елизавета Либерман, старший научный сотрудник Тобольской комплексной научной станции: «На наличие гельминтозов. В карповых видах это описторхоз, который наносит человеку и млекопитающим большой вред, дифиллоботриоз — это ленточные черви, которые также опасны для человека».

Исследуют улов в такой передвижной лаборатории. Здесь биологи, которые приехали в Югру из Тобольска, взвешивают рыбу и измеряют её длину. По чешуе определяют возраст, узнают пол. Щука оказалась самкой, третьей степени зрелости. Наличие либо отсутствие гельминтов учёные видят по внутренним органам.

Екатерина Воропаева, младший научный сотрудник Тобольской комплексной научной станции: «Обнаружить данного паразита можно и невооруженным глазом, цисты могут находиться на внутренних органах, что не требует отдельного вскрытия».

Пойманная щука оказалась здоровой. Помимо неё, учёные изучают окуня, пелядь и плотву. И биологам уже есть, чем порадовать. У обитателей озёр в Белоярском районе не нашли описторхоза. Однако не стоит забывать, что рыба — это не единственный возможный «дом» для паразитов.

«Здесь очень важно смотреть ещё промежуточных хозяев. Мы смотрим второго хозяина — это рыба, а первый — моллюски. Возможно, их нет в озере. Возможно, что-то с ними произошло, что они убавились. И поэтому нет заболевания, гельминта. Это тема для изучения», — рассказала ОТРК «Югра» старший научный сотрудник Тобольской комплексной научной станции Елизавета Либерман.

Чтобы заболевания не передались человеку, рыбу следуют подвергать термической обработке. Паразиты погибают от низких и высоких температур. Однако одно понятно точно, уезжать учёным из Югры будет тяжело.

Изучение паразитов щуки (Esox lucius Linnaeus, 1785) из реки Чамхали, водно-болотные угодья Анзали и Амиркелайе, Иран

J Parasit Dis. 2016 сен; 40 (3): 1033–1037.

, 1 , , 2 и 2 и 2 и 1 2 Ali Sadrinejad

1 молодые исследователи клуб, русло, рулет, ветвь Roodsar, исламский азадский университет, Roodsar, Iran

Hossein Khara

2 Департамент промысла, Лахиджанское отделение Исламского университета Азад, П.O. Box 1616, Лахиджан, Иран

Маджид Гударзи

1 Клуб молодых исследователей, отделение Рудсар, Исламский университет Азад, Рудсар, Иран

1 Клуб молодых исследователей, отделение Рудсар, Исламский университет Азад, Рудсар, Иран

2 Департамент рыболовства, Лахиджанский филиал, Исламский университет Азад, PO Box 1616, Lahijan, Иран

Автор, ответственный за переписку.

Поступила в редакцию 6 марта 2014 г.; Принято 3 декабря 2014 г.

Copyright © Индийское общество паразитологии, 2014 г. Для изучения состояния здоровья изучено разнообразие и численность паразитов в трех популяциях щуки.Для этой цели было поймано всего 90 рыб из трех естественных местообитаний щуки, включая реку Чамхале, водно-болотные угодья Энзели и Амиркелайех, Иран. После биометрии и определения возраста рыб вскрывали и исследовали паразитов в кишечнике, жабрах и глазах. В результате было выявлено пять видов паразитов во всем теле щуки, в том числе Eustrongylides exises , Raphidascaris acus и Triaeophorus crassus в кишечнике, Tetraonchus monenteron в жабрах и Diplostomum 9046 в глазу.Наиболее высокие значения количественных показателей численности паразитов [т.е. процент заболеваемости (86,66 %), средняя интенсивность (60,83 ± 39,92), средняя численность (58,14 ± 34,6) и диапазон численности (1–232)] были зарегистрированы для T. monenteron во всех трех регионах отбора проб. Самые низкие значения этих количественных показателей были обнаружены для D. spathaceum , E. exises и Tetraonchus crassus в водно-болотных угодьях Анзали, на реке Чамхале и водно-болотных угодьях Амиркелайе соответственно. У 2-, 3- и 4-летних щук T.monenteron имел самые высокие значения количественных показателей численности паразита. В заключение, наши результаты показали, что водно-болотные угодья Энзели имеют большее загрязнение паразитами по сравнению с другими регионами отбора проб. Это может быть связано с более быстрой эвтрофикацией в этом водно-болотном угодье по сравнению с водно-болотным угодьем Амиркелайе и рекой Чамхале.

Ключевые слова: Паразиты, процент заболеваемости, Esox lucius Linnaeus, водно-болотные угодья

Введение

Водные животные постоянно подвергаются воздействию различных природных и антропогенных агентов, которые угрожают их выживанию и здоровью.Патогены, включая паразитов, бактерии, вирусы и грибки, представляют естественную угрозу для популяций рыб в водных экосистемах. Среди них паразиты являются обычным явлением, и рыбы служат хозяевами для широкого круга паразитов (May and Anderson, 1979; Barber et al., 2000). Изучение паразитов рыб может предоставить ценную информацию о состоянии здоровья хозяина и экологии популяции, например, различить отдельные популяции одного и того же вида рыб. Кроме того, знание биологии и особых свойств паразитов может помочь понять стратегии, используемые хозяевами в ответ на вторжение паразитов, и определить терапевтические стратегии (Poulin 1998; Barber et al.2000). Щука, Esox lucius Linnaeus, является одной из ценных пресноводных рыб в мире, включая Иран, благодаря своим товарным, питательным и спортивным качествам. Этот вид принадлежит к отряду Protacanthptergii и семейству Esocidae. Щука является плотоядным видом и питается широким спектром источников пищи, преимущественно мелкой рыбой, а иногда и насекомыми и амфибиями, когда их обычной пищи мало. Щука обычно предпочитает неподвижную воду или песчаные отмели с медленным течением воды вместе с водными растениями (Raat 1998).

В Иране популяции щуки были распространены в многочисленных естественных пресноводных экосистемах, таких как реки Чамхейл и Сефидруд, и водно-болотных угодьях, таких как Энзели, Амиркелайех и Буджаг на севере Ирана, в бассейне Каспийского моря. Популяции щуки более уязвимы из-за особенностей питания и положения в пищевой пирамиде. Нахождение на более высоких уровнях пищевой пирамиды может привести к большему накоплению паразитов у щуки. Насколько нам известно, нет сведений об идентификации и численности паразитов в популяциях щуки Ирана.С этой целью настоящее исследование было направлено на выявление и сравнение паразитов щуки из трех естественных местообитаний, включая реку Чамхале, водно-болотные угодья Энзели и Амиркелайе.

Материалы и методы

Отбор проб рыбы производился в трех акваториях, включая реку Чамхале, водно-болотные угодья Анзали и Амиркелайех (около Каспийского моря), Иран. В связи с этим сначала места отбора были определены по GPS, а затем Рыба была отловлена ​​сачком. Всего 90 щук (общий вес: 421.2 ± 72,8 г; общая длина: 37,6 ± 4,7 см) были выловлены в этих районах в осенне-зимний сезон, а затем переданы в лабораторию Исламского университета Азад в Лахиджане для дальнейших исследований. В лаборатории стандартную длину и вес каждой рыбы измеряли с точностью до миллиметра и миллиграмма соответственно, а их пол определяли после вскрытия и исследования гонад. Также определение возраста проводилось путем взятия проб чешуи у каждой щуки и подсчета количества колец на каждой чешуе (Никольский, 1963). После определения возраста щуки обследовали на наличие внешних паразитов (в жабрах и глазах). а затем препарировали и исследовали внутренне на наличие внутренних паразитов в кишечнике.После наблюдения за паразитами их собирали из глаз, жабр и кишечника с помощью иглы и фиксировали в 10 % формалине. Паразитов окрашивали кармин-квасцами, промывали в кислом спирте, обезвоживали в спиртовой серии, очищали в ксилоле и заключали в канадский бальзам (Малек и Мобеди, 2001). После приготовления влажного препарата паразитов исследовали и фотографировали под световым микроскопом и стереомикроскопом для идентификации видов паразитов. Количественные показатели популяций паразитов рассчитывали по следующей формуле (Bush et al.1997):

  1. Средняя интенсивность = Общее количество особей определенного паразита/количество инфицированных хозяев того же паразита

  2. Средняя численность = Общее количество особей определенного паразита/общее количество хозяев этого обследованного

  3. Процент заболеваемости = (Общее число зараженных хозяев/общее количество обследованных хозяев) × 100

  4. Диапазон численности = Минимальное и максимальное количество определенного паразита, наблюдаемое в зараженном хозяине

Все данные были проанализированы SPSS программное обеспечение (версия 16).Поскольку все данные были непараметрическими, нормальность данных была проверена с помощью критерия Шапиро-Уилка. Поскольку все данные не имели нормального распределения, достоверные различия исследовали с помощью теста Курскала-Валиса. Затем был применен тест Манна-Уитни, чтобы определить, какие средства различаются.

Результаты

Среди обследованных щук выделено пять возрастных групп: 2, 3, 4, 5 и 6 лет. Кроме того, мужские и женские номера были 53 и 37 соответственно. Пять видов паразитов были идентифицированы во всем теле щуки, в том числе Eustrongylides exises , Raphidascaris acus и Triaeophorus crassus в кишечнике, Tetraonchus monenteron в жабрах и Diplostomum spathaceum 9004). Самый высокий процент заболеваемости, средняя интенсивность, средняя численность и диапазон численности были обнаружены для T. monenteron во всех трех регионах отбора проб (таблица). Самые низкие значения этих количественных показателей были зарегистрированы для D. spathaceum , E. exises и T. crassus в водно-болотных угодьях Анзали, на реке Чамхале и водно-болотных угодьях Амиркелайе соответственно (таблица). Наблюдались значительные различия в средней численности T. monenteron и R. acus щук между всеми исследованными районами отбора проб (P < 0.05). Средняя численность T. Crassus и E. Exicus не показала существенных различий между всеми исследованными районами выборки (P > 0,05). У 2-, 3- и 4-летних щук T. monenteron имели самые высокие значения количественных показателей численности паразита. Также R. acus , E. exises и D. spathaceum имели самые низкие значения количественных показателей численности паразита у 2-, 3- и 4-летних щук соответственно (таблица).Существовали значительные различия в средней численности R. acus щук между всеми возрастными группами (P <0,05). Средняя численность T. Crassus , T. monenteron и E. exises не показала существенных различий между всеми возрастными группами (P > 0,05). У обоих полов щуки самые высокие значения количественных показателей отмечены у T. monenteron . У самцов щуки R. acus , а также E. exises и D. spathaceum имели самые низкие значения процента встречаемости и других количественных показателей соответственно.У самок щуки самые низкие значения количественных показателей отмечены у E. exises и D. spathaceum . Не было никаких существенных различий в средней численности всех наблюдаемых паразитов между двумя полами (P > 0,05).

Идентифицированные виды паразитов в кишечнике, жабрах и глазах щуки, Esox Lucius Linnaeus, 1785

Диплостомум спатоцеум Tertaonchus monenteron Триенофор крассус Eustrongylides exises Raphidascaris acus Индексы Области выборки 3.33 86.66 86.66 — — — 46.66 Заболеваемость процентами 1 60.83 ± 39,92 — — 2,29 ± 1,68 Интенсивность 0,18 ± 0,03 58,14 ± 34,6 — — — — — — — — 1-1 1-232 — — — 1–6 Диапазон численности – 53.33 13.33 13.33 — — 10201 — 10 0 0 0 Amirkelayeh Weacland (n = 30) — 13.94 ± 8.31 2 ± 1,16 — 3 ± 2 Средняя интенсивность — 9.32 ± 7.69 9.32 ± 7.69 0,79 ± 0.28 — — 1,07 ± 0.36 — 1-31 1-3 — 1 –5 Диапазон численности – 70 13.33 3.33 3.33 26.6 26.6 Заболеваемость Процента Река Чамхале (N = 30) — 41.25 ± 16 1,25 ± 0,5 1,25 ± 0,5 1 2,83 ± 2 Средняя интенсивность — — 34.53 ± 10.84 0,45 ± 0,16 0,18 ± 0,03 1.63 ± 0.52 Среднее обилие — 1-193 1-2 1-1 1–9 Диапазон численности

Таблица 2

Количественные показатели паразитарного населения щук разного возраста

— — —
Диплостомум спатоцеум Tertaonchus monenteron Триенофор крассус Eustrongylides exises Raphidascaris acus Индексы Возраст
33.33 33.33 33.33 Процент заболеваемости 2+
(N = 3)
1 ± 1 Средняя интенсивность
1.67 ± 2.89 0,33 ± 0,5
5 1-1 Диапазон обилий
71.87 70202 7.81 7.81 1.56 17.18 17.18 Заболеваемость процентами 3+
(n = 64)
11.76 ± 16.68 2 ± 1 1 ± 1,34 Средняя интенсивность
80201 — 8.45 ± 15.31 0,16 ± 0,5 0,02 ± 0.125 0.34 ± 0,93 Среднее содержание
1-3 1-3 1–1 1–5 Диапазон численности
4.54 72.72 13.63 13.63 59.09 59.09 Заболеваемость процента 4+
(N = 23)
1 ± 0 68,67 ± 8.82 1 ± 0 262 ± 2.6 Средняя интенсивность
0,12 ± 0,02 73.21 ± 49,05 0,35 ± 0,14 1,62 ± 2.39 Среднее количество обилия
1-1 1-232 1-232 1–1 1–9 Диапазон численности

Обсуждение

Водные животные, особенно рыбы, постоянно подвергаются естественным и антропогенным угрозам в водной среде.В этом исследовании пять видов паразитов были зарегистрированы в исследованных регионах, то есть на реке Чамхале, водно-болотных угодьях Анзели и Амиркелайех. Наши результаты показали, что наиболее распространенным паразитом щуки является T. monenteron , из которых 70 % приходится на реку Чамхале, 86,6 % — на водно-болотные угодья Энзели и 53,33 % — на водно-болотные угодья Амиркелайе. Этот паразит представляет собой моногенею, вызывающую инфекцию жабр и кожи. Заражение паразитом вызывает дегенерацию и кровоизлияния в жабрах и коже. Ранее сообщалось об этом паразите различных видов рыб из Ирана и других точек мира, и он был известен как паразит различных пресноводных рыб (Kearn 1966; Arai and Chien 1973; Sutherland and Holloway 1979; Soylu 2009).Другим распространенным паразитом в этом исследовании был R. acus , который является обычной нематодой у нескольких рыб-хозяев. Личинки R. acus в печени вызывают повреждение тканей и фиброз. Взрослая форма этого паразита предпочитает кишечник рыбы для роста и размножения, что может замедлить рост рыбы (Smith. 1984; Moravec and Frantova 2003). В этом исследовании некоторые идентифицированные паразиты, включая E. exises, T. crassus и D. spathaceum , имели более низкий процент заболеваемости. Было установлено, что несколько видов рыб, включая плотву, бычков (Gobidae), осетровых (Acipenseridae) и щук (Esocidae), выступают в качестве вторичных промежуточных хозяев для E.существует. Этот паразит с разрушением мускулатуры рыбы снижает ее товарность (Sattari et al. 2003). Обычно основные симптомы болезни D. spathaceum наблюдаются в глазах рыб, включая экзофтальм, локальные кровоизлияния, исхудание, деформацию позвоночного столба и скопление глазных сосальщиков, а при массивных инвазиях катаракту и слепоту (Karvonen et al. 2004; Voutilainen и др., 2008 г.; Рамадан, 2012 г.). В нашем исследовании паразитарное загрязнение было выше у 4-, 5- и 6-летних щук, чем у 2- и 3-летних особей.Похоже, что стареющая щука с большим размером тела может нести больше паразитов, чем более молодая особь с меньшими размерами тела. В нашем исследовании самое высокое загрязнение паразитами было зафиксировано для водно-болотных угодий Энзели по сравнению с рекой Чамхале и водно-болотными угодьями Амиркелайе. Это, вероятно, показывает, что тенденция к эвтрофикации более быстрая, чем в реке Чамхале и водно-болотных угодьях Амиркелайех. Эта эвтрофикация может быть связана с большим поступлением органических и неорганических загрязнителей промышленности и сельского хозяйства на водно-болотные угодья Энзели. Кроме того, более высокий процент заболеваемости паразитами в водно-болотных угодьях Анзели может вернуться к большему количеству промежуточных хозяев в этом регионе по сравнению с рекой Чамхейл и водно-болотными угодьями Амиркелайех.В заключение, это исследование показывает, что из-за разнообразия и обилия паразитов у щук абсолютно необходимо управление здоровьем и окружающей средой для уменьшения опасного воздействия паразитов на водно-болотные угодья реки Чамхейл, Анзели и Амиркелайе.

Ссылки

  • Arai HP, Chien S-M. Заметка о некоторых Monogenea (Trematoda) из рыб Альберты. Джан Джей Зул. 1973; 51:1318. дои: 10.1139/z73-189. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Барбер И., Хоар Д., Краузе Дж.Влияние паразитов на поведение рыб: обзор и эволюционная перспектива. Преподобный Фиш Биол Рыболовство. 2000; 10: 131–165. doi: 10.1023/A:1016658224470. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Буш А.О., Лафферти К.Д., Лотц Дж.М., Шостак А.В. и др. Паразитология встречается с экологией на своих условиях: Margolis et al. пересмотрено. J Паразитол. 1997; 83: 575–583. дои: 10.2307/3284227. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Karvonen A, Seppälä O, Valtonen ET. Формирование катаракты у рыб, вызванное глазным трематодом: количественный анализ с использованием офтальмологического микроскопа.Паразитология. 2004; 129: 473–478. doi: 10.1017/S0031182004006006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Kearn GC. Адгезивный механизм моногенного паразита Tetraonchus monenteron из жабр щуки (Esox lucius) Паразитология. 1966; 56: 505–510. doi: 10.1017/S0031182000068980. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Малек М., Мобеди И. Распространение Clinostomum Complanatum(Rudolphi, 1819) (Digenea:Clinostomatidae) в Capoeta capoeta gracilis (Osteichthys: Cyprinidae) из реки Широуд, Иран.Иран J Общественное здравоохранение. 2001; 30:95–98. [Google Scholar]
  • Мэй Р.М., Андерсон Р.М. Популяционная биология инфекционных болезней. Природа. 1979; 280: 455–461. дои: 10.1038/280455a0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Moravec F, Frantova D. Наблюдения за передачей и сезонностью заражения нематодой Cystidicoloides ephemeridarum в Salmo trutta fario в небольшом форелевом ручье в Северной Богемии, Чешская Республика . Акта Паразитол. 2003; 48:41–46. [Google Scholar]
  • Никольский Г.В.Экология рыб. Лондон: Академический; 1963. с. 352. [Google Scholar]
  • Пулен Р. Эволюционная экология паразитов: от особей к сообществам. Лондон: Чепмен и Холл; 1998. с. 212. [Google Scholar]
  • Raat AJP (1998) Сводка биологических данных по щуке Esox lucius Linnaeus, 1758. FAO Fisheries Synopsis No. 30 Rev. 2. SAST — Pike — 1,24(03)001 ,01
  • Рамадан РАМ. Влияние и сезонная динамика Diplostomum spathaceum (глазная двуустка) на Oreochromis nilotcus на рыбной ферме Аббасса, Египет.Египет J Aquac. 2012;2:105–113. [Google Scholar]
  • Саттари М., Мохайер Б., Хашеминасаб М.Ф. Паразиты Acipenser gueldenstaedti , A. nudiventris и huso huso (Chondrostei: Acipenseridae) с юго-запада Каспийского моря (на персидском языке) J Vet Res. 2003; 57: 33–38. [Google Scholar]
  • Смит Д.Д. Развитие Raphidascaris acus (Nematoda, Anisakidae) у паратенических, промежуточных и окончательных хозяев. Джан Джей Зул. 1984; 62: 1378–1386. дои: 10.1139/z84-198.[CrossRef] [Google Scholar]
  • Soylu E. Моногеновые паразиты на жабрах некоторых видов рыб из озер Сапанджа и Дурусу, Турция. ЕВРОПА. J Fish Aquat Sci. 2009; 26: 247–251. [Google Scholar]
  • Sutherland DR, Holloway HL, Jr Паразиты рыб из рек Миссури, Джеймс, Шайенн и Уайлд-Райс в Северной Дакоте. Proc Helminthol Soc Wash. 1979; 46:128–134. [Google Scholar]
  • Вотилайнен А., Фигейредо К., Хуусконен Х. Влияние глазного двуустка Diplostomum spathaceum на энергетику и питание арктического гольца Salvelinus alpinus .Дж. Фиш Биол. 2008;73:2228–2237. doi: 10.1111/j.1095-8649.2008.02050.x. [CrossRef] [Google Scholar]

Реакция кишечника щуки на Acanthocephalus lucii (Acanthocephala): иммуногистохимическое и ультраструктурное исследования | Parasites & Vectors

  • Reynolds LA, Brett Finlay B, Maizels RM. Сожительство в кишечнике: взаимодействие паразитов-гельминтов, бактериальной микробиоты и иммунитета хозяина. Дж Иммунол. 2015;195:4059–66.

    Артикул пабмед ПабМед Центральный КАС Google ученый

  • Маккракен В.Дж., Лоренц Р.Г.Экосистема желудочно-кишечного тракта: шаткий союз эпителия, иммунитета и микробиоты. Клеточная микробиология. 2001; 3:1–11.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Гомес Д., Суньер Дж. О., Салинас И. Иммунная система слизистых оболочек рыб: эволюция толерантности к комменсалам при борьбе с патогенами. Иммунол рыбных моллюсков. 2013; 35:1729–39.

    Артикул пабмед ПабМед Центральный КАС Google ученый

  • McKay DM, Fairweather I.Роль энтеральной нервной системы в ответе на гельминтозы. Паразитол сегодня. 1997; 13:63–9.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Боси Г., Доменегини С., Арриги С., Гиари Л., Симони Э., Дезфули Б.С. Реакция нейроэндокринной системы кишечника Leuciscus cephalus (L.) на присутствие Pomphorhynchus laevis Müller, 1776 (Acanthocephala). Гистол Гистопатол. 2005; 20: 509–18.

    ПабМед КАС Google ученый

  • Боси Г., Шинн А.П., Гиари Л., Симони Э., Пирони Ф., Дезфули Б.С. Изменения нейромодуляторов диффузной эндокринной системы пищеварительного тракта выращиваемой радужной форели Oncorhynchus mykiss (Walbaum), естественно зараженной Eubothrium crassum (Cestoda). Дж. Фиш Дис. 2005; 28: 703–11.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Боси Г., Джари Л., ДеПаскуале Дж. А., Карози А., Лоренцони М., Дезфули Б. С.Защитные реакции клеток слизистой оболочки кишечника в ряде систем рыбогельминтов. Дж. Фиш Дис. 2017;40:1001–14.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Палмер Дж.М., Гринвуд-Ван М.Б. Интегративная нейроиммуномодуляция функции желудочно-кишечного тракта при кишечном паразитозе. J Паразитол. 2001; 87: 483–504.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Дезфули Б.С., Боси Г., ДеПаскуале Дж.А., Манера М., Гиари Л.Врожденный иммунитет рыб против кишечных гельминтов. Иммунол рыбных моллюсков. 2016;50:274–87.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Secombes CJ, Ellis AE. Иммунология костистых рыб. В: Робертс Р.Дж., редактор. Патология рыб. 4-е изд. Чичестер: Издательство Блэквелл; 2012. с. 144–66.

  • Дезфули Б.С., Гиари Л. Тучные клетки в жабрах и кишечнике естественно инфицированных рыб: признаки миграции и дегрануляции.Дж. Фиш Дис. 2008; 31: 845–52.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Дезфули Б.С., Луи А., Джари Л., Пирони Ф., Манера М., Лоренцони М., Нога Э.Дж. Piscidins в кишечнике европейского окуня Perca fluviatilis , естественно инфицированного кишечным червем. Иммунол рыбных моллюсков. 2013; 35:1539–46.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Чиффи Баккари Г., Пинелли С., Сантильо А., Минуччи С., Растоги РК.Тучные клетки немлекопитающих позвоночных. Обзор. Int Rev Cell Mol Biol. 2011; 290:1–53.

    Артикул КАС Google ученый

  • Hepworth MR, Daniłowicz-Luebert E, Rausch S, Metz M, Klotz C, Maurer M, Hartmann S. Тучные клетки организуют иммунитет типа 2 к гельминтам посредством регуляции тканевых цитокинов. Proc Natl Acad Sci USA. 2012;109:6644–9.

    Артикул пабмед Google ученый

  • Мекори Ю.А.Мастоцит: «другая» воспалительная клетка в иммунопатогенезе. J Аллергия Клин Иммунол. 2004; 114:52–7.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Авраам С.Н., Сент-Джон А. Организованный тучными клетками иммунитет к патогенам. Нат Рев Иммунол. 2010;10:440–52.

    Артикул пабмед ПабМед Центральный КАС Google ученый

  • Reite OB, Evensen Ø.Воспалительные клетки костистых рыб: обзор тучных клеток / эозинофильных зернистых клеток и стержневых клеток. Иммунол рыбных моллюсков. 2006; 20: 192–208.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Дезфули Б.С., Бо Т., Лоренцони М., Шинн А.П., Гиари Л. Тонкая структура и клеточные реакции на границе хозяин-паразит в ряде рыбо-гельминтных систем. Вет Паразитол. 2015; 208: 272–9.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Dezfuli BS, Fernandes CE, Galindo GM, Castaldelli G, Manera M, DePasquale JA, et al.Нематодная инфекция печени рыбы Gymnotus inaequilabiatus (Gymnotiformes: Gymnotidae) из региона Пантанал в Бразилии: патобиология и воспалительная реакция. Векторы паразитов. 2016;9:473.

    Артикул КАС Google ученый

  • Stead RH, Tomioka M, Quinonez G, Simon GT, Felten SY, Bienenstock J. Тучные клетки слизистой оболочки кишечника в нормальном и инфицированном нематодами кишечнике крыс находятся в тесном контакте с пептидергическими нервами.Proc Natl Acad Sci USA. 1987; 84: 2975–9.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Пономарев Т., Пейн Х., Фабриц Л., Вагнер Д.Д., Брилл А. Гранулярное содержимое тучных клеток имеет решающее значение для тромбоза глубоких вен у мышей. Тираж Рез. 2017; 121:941–50.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Дезфули Б.С., Кастальделли Г., Джари Л. Гистопатологическая и ультраструктурная оценка двух видов мугилидов, инфицированных миксозоями и гельминтами.Дж. Фиш Дис. 2018;41:299–307.

    Артикул КАС Google ученый

  • Боси Г., Шинн А.П., Гиари Л., Дезфули Б.С. Кишечные нейромодуляторы и выделения слизи у рыб, зараженных кишечным гельминтом Pomphorhynchus laevis . Векторы паразитов. 2015;8:359.

    Артикул пабмед ПабМед Центральный КАС Google ученый

  • Манера М., Джаммарино А., Боррека С., Гиари Л., Дезфули Б.С.Дегрануляция тучных клеток, вызванная соединением 48/80, вызывает зависящее от концентрации сокращение кишечника у радужной форели ( Oncorhynchus mykiss Walbaum) ex vivo . J Exp Zool Часть A. 2011; 315A: 447–57.

    Артикул КАС Google ученый

  • Манера М., Дезфули Б.С., Боррека С., Гиари Л. Использование фрактальной размерности и лакунарности в характеристике дегрануляции тучных клеток у радужной форели ( Onchorhynchus mykiss ).Дж Микроск. 2014; 256:82–9.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Ребер Л.Л., Сибилано Р., Мукаи К., Галли С.Дж. Потенциальные эффекторные и иммунорегуляторные функции тучных клеток в мукозальном иммунитете. Иммунол слизистых оболочек. 2015; 8: 444–63.

    Артикул пабмед ПабМед Центральный КАС Google ученый

  • Сир М.Ф., Вернье Дж.М. Частичная характеристика эозинофильных зернистых клеток (ЭГК) и идентификация тучных клеток собственной пластинки кишечника радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ).Биохимическое и цитохимическое исследование. Биол Клетка. 1995; 85: 35–41.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Дезфули Б.С., Арриги С., Доменегини С., Боси Г. Иммуногистохимическое определение нейромодуляторов в кишечнике Salmo trutta L., естественно инфицированного Cyathocephalus truncatus Pallas (Cestoda). Дж. Фиш Дис. 2000; 23: 265–73.

    Артикул КАС Google ученый

  • Рейте ОБ.Палочки костистых рыб: их потенциальная роль в защите хозяина по отношению к роли тучных клеток/эозинофильных зернистых клеток. Иммунол рыбных моллюсков. 2005; 19: 253–67.

    Артикул пабмед Google ученый

  • Mulero I, Sepulcre MP, Meseguer J, García-Ayala A, Mulero V. Гистамин хранится в тучных клетках наиболее эволюционно развитых рыб и регулирует воспалительную реакцию рыб. Proc Natl Acad Sci USA.2007; 104:19434–9.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Дезфули Б.С., Манера М., Гиари Л., ДеПаскуале Дж.А., Боси Г. Возникновение иммунных клеток в стенке кишечника Squalius cephalus , инфицированных Pomphorhynchus laevis . Иммунол рыбных моллюсков. 2015; 47: 556–64.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Silphaduang U, Colorni A, Noga EJ.Доказательства широкого распространения антимикробных пептидов пицидина у костистых рыб. Орган «Дис Аква». 2006; 72: 241–52.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Корралес Дж., Гордон В.Л., Нога Э.Дж. Разработка ELISA для количественного определения антимикробного пептида писцидина 4 и его применение для оценки стресса у рыб. Иммунол рыбных моллюсков. 2009; 27: 154–63.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Дезфули Б.С., Пирони Ф., Гиари Л., Нога Э.Дж.Иммуноцитохимическая локализация пицидина в тучных клетках инфицированной жабры морского окуня. Иммунол рыбных моллюсков. 2010; 28: 476–82.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Salger SA, Cassady KR, Reading BJ, Noga EJ. Разнообразное семейство пептидов защиты хозяина (писцидины) проявляет специализированную антибактериальную и антипротозойную активность у рыб. ПЛОС Один. 2016;11:e0159423.

    Артикул пабмед ПабМед Центральный КАС Google ученый

  • Хавиксбек Дж.Дж., Барреда Д.Р.Развитие, миграция и функция нейтрофилов у костистых рыб. Биология. 2015;4:715–34.

    Артикул пабмед ПабМед Центральный КАС Google ученый

  • Палич Д., Остойич Дж., Андреасенц К.Б., Рот Дж.А. Сети, забрасываемые рыбой: Нейтрофильные внеклеточные ловушки высвобождаются из нейтрофилов рыб. Дев Комп Иммунол. 2007; 31:805–16.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Дезфули Б.С., Джовинаццо Г., Луи А., Гиари Л.Воспалительная реакция на Dentitruncus truttae (Acanthocephala) в кишечнике кумжи. Иммунол рыбных моллюсков. 2008; 24: 726–33.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Маршалл Дж.С., Джавдат Д.М. Тучные клетки врожденного иммунитета. J Аллергия Клин Иммунол. 2004; 114:21–7.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Овчаренко М., Дезфули Б.С., Кастальделли Г., Ланцони М., Гиари Л.Гистологическое и ультраструктурное исследование Myxobolus mugchelo (Parenzan, 1966) с первоначальным гистопатологическим исследованием кишечника хозяина Liza ramada . Паразитол рез. 2017;116:1713–21.

    Артикул пабмед Google ученый

  • Даэрон М., Мальбек О., Латур С., Арок М., Фридман В.Х. Регуляция активации тучных клеток, опосредованной высокоаффинными рецепторами IgE, с помощью мышиных низкоаффинных рецепторов IgG. Джей Клин Инвест.1995; 95: 577–85.

    Артикул пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  • Kraft S, Kinet J-P. Новые разработки в области регуляции, функции и ингибирования FcεRI. Nature Rev. 2007; 7: 365–78.

    КАС Google ученый

  • Bannert C, Bidmon-Fliegenschnee B, Stary G, Hotzy F, Stift J, Nurko S, et al. Fc-эпсилон-RI, высокоаффинный IgE-рецептор, сильно экспрессируется в верхних отделах желудочно-кишечного тракта и модулируется воспалением слизистой оболочки.ПЛОС Один. 2012;7:e42066.

    Артикул пабмед ПабМед Центральный КАС Google ученый

  • Fujiki K, Shin DH, Nakao M, Yano T. Молекулярное клонирование и экспрессионный анализ карпа ( Cyprinus carpio ) интерлейкин-1 бета, высокоаффинный иммуноглобулин E гамма-субъединица рецептора Fc и сывороточный амилоид A. Fish Shellfish Immunol . 2000; 10: 229–42.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Стаффорд Дж.Л., Уилсон М., Наяк Д., Куиниу С.М., Клем Л.В., Миллер Н.В., Бенгтен Э.Идентификация и характеристика гомолога FcR у экзотермических позвоночных, канального сома ( Ictalurus punctatus ). Дж Иммунол. 2006; 177: 2505–17.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Yoder JA, Litman RT, Mueller MG, Desai S, Dobrinski KP, Montgomery JS, et al. Разрешение кластера генов нового рецептора иммунного типа у рыбок данио. Proc Natl Acad Sci USA. 2004; 101:15706–11.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Даас С., Теха Э.М., Добсон Дж.Т., Насралла Г.К., Макбрайд Э.Р., Ван Х. и др.Тучные клетки рыбок данио обладают FcεRI-подобным рецептором и участвуют во врожденных и адаптивных иммунных реакциях. Дев Комп Иммунол. 2011;35:125–34.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Чен Х, Фэн Б.С., Чжэн П.Ю., Ляо Х.К., Чун Дж., Тан С.Г., Ян П.К. Передача сигналов гамма-рецептора Fc в тучных клетках связывает микробную стимуляцию с иммунным воспалением слизистой оболочки кишечника. Ам Джей Патол. 2008; 173:1647–56.

    Артикул пабмед ПабМед Центральный КАС Google ученый

  • Заслофф М.Антимикробные пептиды многоклеточных организмов. Природа. 2002; 415:389–95.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Катценбак Б.А. Антимикробные пептиды как медиаторы врожденного иммунитета костистых рыб. Биология. 2015; 4: 607–39.

    Артикул пабмед ПабМед Центральный КАС Google ученый

  • Silphaduang U, Noga EJ. Пептидные антибиотики в тучных клетках рыб.Природа. 2001; 414: 268–9.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Noga EJ, Silphaduang U. Piscidins: новое семейство пептидных антибиотиков из рыбы. Перспектива новостей о наркотиках. 2003; 16: 87–92.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Lauth X, Shike H, Burns JC, Westerman ME, Ostland VE, Carlberg JM, et al. Открытие и характеристика двух изоформ моронецидина, нового антимикробного пептида гибридного полосатого окуня.Дж. Биол. Хим. 2002; 277:5030–9.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Дезфули Б.С., Джари Л., Луи А., Лоренцони М., Нога Э.Дж. Реакция тучных клеток на Ergasilus (Copepoda), жаберный эктопаразит морского леща. Иммунол рыбных моллюсков. 2011;30:1087–94.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Дезфули Б.С., Джари Л., Лоренцони М., Манера М., Нога Э.Дж.Реакция печени окуня на плероцеркоиды Triaenophorus nodulosus с акцентом на пицидины 3, 4 и экспрессию пролиферативного клеточного ядерного антигена (PCNA). Вет Паразитол. 2014; 200:104–10.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Buhner S, Schemann M. Ось тучных клеток и нервов с фокусом на кишечнике человека. Биохим Биофиз Акта. 1822; 2012: 85–92.

    Google ученый

  • Галлиндо-Вильегас Х., Гарсия-Гарсия Э., Мулеро В.Роль гистамина в регуляции кишечного иммунитета рыб. Дев Комп Иммунол. 2016;64:178–86.

    Артикул КАС Google ученый

  • Смолинска С., Джутель М., Крамери Р., О’Махони Л. Гистамин и иммунная регуляция слизистой оболочки кишечника. Аллергия. 2014;69:273–81.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Гомес Гонсалес Н.Е., Кабас I, Монтеро Х., Гарсия Алькасар А., Мулеро В., Гарсия А.А.Гистамин и соединение активатора тучных клеток 48/80 являются безопасными, но неэффективными системными адъювантами для вакцинации дорады. Дев Комп Иммунол. 2017; 72:1–8.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Луи А., Манера М., Джари Л., Мулеро В., Дезфули Б.С. Ацидофильные гранулоциты в жабрах дорады Sparus aurata : свидетельство их реакции на естественное заражение копеподным эктопаразитом.Сотовые Ткани Res. 2013; 353:465–72.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Ютел М, Акдис М, Акдис К.А. Гистамин, гистаминовые рецепторы и их роль в иммунной патологии. Клин Эксперт Аллергия. 2009; 39: 1786–800.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Хикима Дж., Минагава С., Хироно И., Аоки Т. Молекулярное клонирование, экспрессия и эволюция гена лизоцима гусиного типа японской камбалы и литическая активность его рекомбинантного белка.Биохим Биофиз Акта. 2001;1520:35–44.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Накиниши Т., Аоки Т., Хикима Д.И., Хироно И., Хиполито С.Г., Такахаши К.Г., Осада М., Ито Н. Биозащита рыбы и моллюсков. В: Аоки Т., редактор. Болезни рыб. Сингапур: Издательство Eolss; 2017. с. 84–121.

  • Юсиф А.Н., Олбрайт Л.Дж., Эвелин ТПТ. Наличие лизоцима в икре кижуча Oncorhynchus kisutch .Дис Аква Орг. 1991; 10:45–9.

    Артикул Google ученый

  • Магнадоттир Б., Ланге С., Гудмундсдоттир С., Бёгвальд Дж., Далмо Р.А. Онтогенез гуморальных иммунных показателей у рыб. Иммунол рыбных моллюсков. 2005; 19: 429–39.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Myrnes B, Seppola M, Johansen A, Overbø K, Callewaert L, Vanderkelen L, et al. Характеристика ферментов и профилирование экспрессии генов лизоцимов атлантического лосося куриного и гусиного типа.Дев Комп Иммунол. 2013;40:11–9.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Гафури З., Хейдари Б., Фарзадфар Ф., Агамаали М. Изменения лизоцимной активности сыворотки и слизи и содержания общего белка у самцов и самок каспийского кутума ( Rutilus frisii kutum Kamensky, 1901) в репродуктивный период. Иммунол рыбных моллюсков. 2014; 37: 139–46.

  • Свейнбьернссон Б., Олсен Р., Паульсен С.Иммуноцитохимическая локализация лизоцима в кишечных эозинофильных зернистых клетках (ЭГК) атлантического лосося: Salmo salar L. J Fish Dis. 1996; 96: 349–55.

    Артикул Google ученый

  • Dezfuli BS, DePasquale JA, Castaldelli G, Giari L, Bosi G. Модель рыбы для изучения взаимосвязи между нейроэндокринными и иммунными клетками в кишечном эпителии: Silurus glanis , зараженный ленточным червем.Иммунол рыбных моллюсков. 2017;64:243–50.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Лосада А.П., Бермудес Р., Файлде Л.Д., Ди Джанкамильо А., Доменегини С., Кирога М.И. Влияние экспериментальной инфекции Enteromyxum scophthalmi на нейроэндокринную систему палтуса, Scophthalmus maximus (L.). Иммунол рыбных моллюсков. 2014;40:577–83.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Гридер младший.Взаимодействие соматостатина, опиоидов и ГАМК-нейронов в регуляции перистальтического рефлекса. Am J Physiol. 1994; 267:G696–701.

    ПабМед КАС Google ученый

  • Зогби С., Тромпетт А., Клаустр Дж., Эль Хомси М., Гарсон Дж., Журдан Г. и др. Бета-казоморфин-7 регулирует секрецию и экспрессию желудочно-кишечных муцинов посредством мю-опиоидного пути. Am J Physiol. 2006; 290:G1105–13.

    КАС Google ученый

  • Нардоччи Г., Наварро К., Кортес П.П., Имарай М., Монтойя М., Валенсуэла Б. и др.Нейроэндокринные механизмы регуляции иммунной системы при стрессе у рыб. Иммунол рыбных моллюсков. 2014;40:531–538.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Dezfuli BS, Lui A, Giovinazzo G, Boldrini P, Giari L. Кишечная воспалительная реакция powan Coregonus lavaretus (Pisces) на наличие скребней. Паразитология. 2009; 136: 929–37.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Дезфули Б.С., Кастальделли Г., Бо Т., Лоренцони М., Гиари Л.Иммунный ответ кишечника Silurus glanis и Barbus barbus , естественно инфицированных Pomphorhynchus laevis (Acanthocephala). Иммунол от паразитов. 2011;33:116–23.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Де Винтер Ю.Б., ван ден Вейнгаард Р.М., де Йонге В.Дж. Тучные клетки кишечника при воспалении кишечника и нарушениях моторики. Биохим Биофиз Акта. 1822; 2012: 66–73.

    Google ученый

  • da Silva WF, Simões MJ, Gutierre RC, Egami MI, Santos AA, Antoniazzi MM, et al.Специальное окрашивание, гистохимия, иммуногистохимия и ультраструктура: исследование тучных клеток/клеток эозинофильных гранул (MCs/EGC) из кишечника Centropomus parallelus . Иммунол рыбных моллюсков. 2017;60:502–8.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Олссон С., Холмгрен С. Контроль моторики кишечника. Comp Biochem Physiol A. 2001; 128:481–503.

    Артикул КАС Google ученый

  • Бермудес Р., Вильяно Ф., Кирога М.И., Ньето Дж.М., Боси Г., Доменегини К.Иммуногистохимическое исследование нейроэндокринной системы пищеварительного тракта палтуса Scophthalmus maximus (L.), инфицированного Enteromyxum scophthalmi (Myxozoa). Иммунол рыбных моллюсков. 2007; 22: 252–63.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Магги Калифорния. Влияние тахикининов на воспалительные и иммунные клетки. Регул Пепт. 1997; 70: 75–90.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Hugjiltu, Rui-ping SRE, Yu-feng L.Иммуногистохимическая характеристика и ультраструктура тучных клеток в основном иммунном аппарате слизистой оболочки кроликов. Чин Дж. Вет. наук. 2007; 27: 536–539.

  • Waeschenbach A, Brabec J, Scholz T, Littlewood DTJ, Kuchta R. Католический вкус широких ленточных червей — несколько путей заражения человека. Int J Паразитол. 2017;47:831–43.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Дезфули Б.С., Пирони Ф., Симони Э., Шинн А.П., Гиари Л.Избранные патологические, иммуногистохимические и ультраструктурные изменения, связанные с инфекцией плероцеркоидами Diphyllobothrium dendriticum (Nitzsch, 1824) (Cestoda) у Coregonus lavaretus (L.) (Coregonidae). Дж. Фиш Дис. 2007; 30: 471–82.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Пауэлл М.Д., Райт Г.М., Бурка Дж.Ф. Индуцированная капсаицином и веществом Р дегрануляция эозинофильных зернистых клеток в кишечнике радужной форели ( Oncorhynchus mykiss Walbaum).Сотовые Ткани Res. 1991; 266: 469–74.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Øvergård AC, Nepstad I, Nerland AH, Patel S. Характеристика и анализ экспрессии цитокинов атлантического палтуса ( Hippoglossus hippoglossus L.): IL-1β, IL-6, IL-11, IL-12β и ИФНγ. Mol Biol Rep. 2012;39:2201–13.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Эйленфельд Р., Диттрих А., Хури С., Мюллер П.Дж., Мютце Б., Вольф А., Шапер Ф.Передача сигналов интерлейкина-6: больше, чем Jaks и STAT. Eur J Cell Biol. 2012;91:486–95.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Rajeshkumar S, Liu Y, Ma J, Duan HY, Li X. Влияние воздействия нескольких тяжелых металлов на биохимические и гистопатологические изменения у обыкновенного карпа, Cyprinus carpio L. Fish Shellfish Immunol. 2017;70:461–72.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Бао С., Коул Н., Уиллкокс М., Бигли К., Чжоу И., Муж А.Дж.Дифференциальная экспрессия мРНК интерлейкина-6 при инфекции Nippostrongylus brasiliensis восприимчивых и резистентных линий мышей. Иммунол Селл Биол. 2000; 78: 646–8.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Ли Э, Чжоу П, Петрин З, Сингер С.М. Зависимый от тучных клеток контроль инфекции Giardia lamblia у мышей. Инфекционный иммунитет. 2004; 72:6642–9.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Гантер У., Арконе Р., Тониатти С., Морроне Г., Чилиберто Г.Двойной контроль экспрессии генов С-реактивного белка интерлейкином-1 и интерлейкином-6. EMBO J. 1989; 8: 3773–9.

    ПабМед ПабМед Центральный КАС Статья Google ученый

  • Кастеллана Б., Илиев Д.Б., Сепулькре М.П., ​​Маккензи С., Гетц Ф.В., Мулеро В., Планас СП. Молекулярная характеристика интерлейкина-6 у дорады ( Sparus aurata ). Мол Иммунол. 2008;45:3363–70.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Nam BH, Byon JY, Kim YO, Park EM, Cho YC, Cheong J.Молекулярное клонирование и характеристика гена интерлейкина-6 камбалы ( Paralichthys olivaceus ). Иммунол рыбных моллюсков. 2007; 23: 231–236.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Kikuchi T, Ishida S, Kinoshita T, Sakuma S, Sugawara N, Yamashita T, Koike K. IL-6 усиливает IgE-зависимое высвобождение гистамина из культивируемых тучных клеток, полученных из периферической крови человека. Цитокин. 2002; 20: 200–9.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Берд С., Зоу Дж., Саван Р., Коно Т., Сакаи М., Ву Дж., Секомб С.Характеристика и анализ экспрессии гомолога интерлейкина 6 у японского иглобрюха, Fugu rubripes . Дев Комп Иммунол. 2005; 29: 775–89.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Илиев Д.Б., Кастеллана Б., Маккензи С., Планас СП, Гетц Ф.В. Клонирование и анализ экспрессии гомолога IL-6 у радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ). Мол Иммунол. 2007;44:1803–7.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Ван Л., Сюй Т., Лэй В.В., Лю Д.М., Ли И.Дж., Сюань Р.Дж., Ма Дж.Дж.Кадмий-индуцированный окислительный стресс и апоптотические изменения в семенниках пресноводного краба, Sinopotamon henanense . ПЛОС Один. 2011;6:e27853.

    Артикул пабмед ПабМед Центральный КАС Google ученый

  • Pérez-Cordón G, Estensoro I, Benedito-Palos L, Calduch-Giner JA, Sitja-Bobadilla A, Pérez-Sánchez J. Экспрессия гена интерлейкина сильно модулируется на локальном уровне в модели рыбьего паразита. Иммунол рыбных моллюсков.2014;37:201–8.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Уотерс Дж.П., Побер Дж.С., Брэдли Дж.Р. Фактор некроза опухоли при инфекционных заболеваниях. Джей Патол. 2013; 230:132–47.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Леппкес М., Рулис М., Нейрат М.Ф., Коллиас Г., Беккер С. Плейотропные функции ФНО-альфа в регуляции реакции кишечного эпителия на воспаление.Инт Иммунол. 2014; 26: 509–15.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Бальестерос Н.А., Родригес Сен-Жан С., Перес-Прието С.И., Акилино С., Тафалла С. Модуляция генов, связанных с рекрутированием иммунных клеток в пищеварительном тракте форели, экспериментально инфицированной вирусом инфекционного панкреонекроза (IPNV) или орально вакцинированы. Дев Комп Иммунол. 2014;44:195–205.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Pennacchi Y, Leef MJ, Crosbie PB, Nowak BF, Bridle AR.Признаки иммунных и воспалительных процессов в жабрах атлантического лосося, пораженного АГД, Salmo salar L. Рыба Ракообразные Иммунол. 2014; 36: 563–70.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Ронза П., Бермудес Р., Лосада А.П., Ситья-Бобадилья А., Пардо Б.Г., Кирога М.И. Иммуногистохимическое обнаружение и экспрессия гена TNFa при энтеромиксозе палтуса ( Scophthalmus maximus ). Иммунол рыбных моллюсков.2015;47:368–76.

    Артикул пабмед КАС Google ученый

  • Болезни рыб | Рыбалка Висконсин

    Несмотря на то, что мы сообщаем о заболеваниях рыб в Висконсине, мы призываем вас продолжать получать удовольствие от рыбалки. Информация, которую мы собрали для вас, предназначена для предотвращения распространения болезней и для того, чтобы вы знали, с какими болезнями вы можете столкнуться и на что обращать внимание в пойманной рыбе.

    Рыболовы: вы можете продолжать получать удовольствие от ловли и поедания улова, пока полностью готовите его перед едой.

    Признаки болезни Пораженная рыба Описание
    Columnaris часто встречается у синежаберных, краппи, желтого окуня и бычков

    Инфекция обычно сначала проявляется у рыб, вызывая потертости и рваные плавники. За этим следует появление изъязвлений на коже и последующая потеря кожи в виде белых или мутных грибовидных пятен, особенно на жаберных лепестках.Слизь часто также скапливается на жабрах, голове и спине. Жабры изменят цвет (светло- или темно-коричневый). Рыба учащенно дышит, что свидетельствует о повреждении жабр. Также распространены анорексия и вялость.

    Лимфосаркома вызывает раковые язвы на коже и мышцах северной щуки и мускусного

    Первоначальное заражение лимфосаркомой может проявляться в виде фиолетовых и розовых волдырей на коже, а затем развиваться в выпуклую опухоль до четырех дюймов в диаметре.Язвы или опухоли чаще всего обнаруживаются на боках рыб, а также на их голове и плавниках и могут не развиваться в течение 6–18 месяцев

    Черная пятнистость у синежаберных и других видов панцирников

    В жизненном цикле этого паразита в качестве животного-хозяина используются птицы, улитки и рыба. Паразитические личинки внедряются в кожу или мышцы рыб и останавливают их развитие. Когда птица съедает зараженную рыбу, личинки превращаются во взрослых паразитов в птице, и цикл начинается снова.Паразит черной пятнистости использует зимородка или чайку в качестве птицы-хозяина.

    Clinostomum (личинки в рыбе), обычно встречающиеся у синежаберных и других панцирников

    В жизненном цикле этого паразита в качестве животного-хозяина используются птицы, улитки и рыба. Церкарии внедряются в мышцы рыб, где развиваются в личинок третьей стадии, называемых метацеркариями . Когда цапля поедает рыбу, метацеркарий развиваются во взрослых паразитов птицы

    Heterosporis часто называют паразитом желтого окуня)

    Мышцы (филе) зараженной рыбы выглядят белыми и непрозрачными, как будто рыба уже была приготовлена ​​или переохлаждена.Жизненный цикл паразита до конца не выработан, но споры паразита развиваются в мышечных клетках и вызывают дегенерацию мышечной ткани. До сих пор биологи-рыболовы не зафиксировали снижения численности желтого окуня в озерах, где присутствует Heterosporis .

    Вирус вирусной геморрагической септицемии может поражать различные виды рыб. В настоящее время насчитывается 25 восприимчивых видов.

    Некоторые признаки ВГС: кровотечение (кровотечение, выпученные глаза), необычное поведение, анемия, вздутие живота и быстрое наступление смерти

    Если вы поймали больную рыбу или наблюдали гибель рыбы, выполните следующие действия

    Для получения дополнительной информации о других паразитах рыб посетите веб-сайт DNR, посвященный инвазивным видам.

    Болезни рыб

    Columnaris часто встречается у синежаберных, краппи, желтого окуня и бычков

    Бактерии обычно попадают в рыбу через жабры, рот или небольшие ранки и преобладают там, где существуют высокие биологические нагрузки или где условия могут быть стрессовыми из-за перенаселенности или низкого уровня растворенного кислорода в толще воды.Бактерии могут сохраняться в воде до 32 дней, если жесткость составляет 50 частей на миллион и более. Инфекция обычно сначала проявляется у рыб, вызывая потертости и рваные плавники. За этим следует появление изъязвлений на коже и последующая потеря эпидермиса в виде белых или мутных грибовидных пятен, особенно на жаберных лепестках. Слизь часто также скапливается на жабрах, голове и спине. Жабры меняют цвет, становясь либо светло-, либо темно-коричневыми, а также могут проявляться некрозы.Рыба будет дышать быстро и тяжело, что свидетельствует о повреждении жабр. Обычны анорексия и вялость, а также смертность, особенно у молодых рыб.
    Узнать больше
    Лимфосаркома вызывает раковые язвы на коже и в мышцах северной щуки и мускусного Первоначальное заражение лимфосаркомой может проявляться в виде фиолетовых и розовых волдырей на коже, а затем развиваться в выпуклую опухоль до четырех дюймов в диаметре.Язвы или опухоли чаще всего обнаруживаются на боках рыб, а также на их голове и плавниках и могут не развиваться в течение от шести до 18 месяцев.
    Узнать больше
    Черная пятнистость у синежаберных и других видов панфиш В жизненном цикле этого паразита в качестве животного-хозяина используются птицы, улитки и рыба.Паразитические личинки внедряются в кожу или мышцы рыб и останавливают их развитие. Когда птица съедает зараженную рыбу, личинки превращаются во взрослых паразитов в птице, и цикл начинается снова. Паразит черной пятнистости использует зимородка или чайку в качестве птицы-хозяина.
    Узнать больше
    Clinostomum (личинки в рыбе), обычно встречающиеся у синежаберных и других панфиш. Clinostomum marginatum — вид паразитической двуустки (класс Trematoda).Его обычно называют «желтым личиком». Он встречается у многих пресноводных рыб Северной Америки, и до сих пор нет рыб, невосприимчивых к этому паразиту. Этот тип двуустки можно найти во рту водоплавающих птиц, таких как цапли и белые цапли. Они также обычно обнаруживаются в пищеводе рыбоядных птиц и рептилий. Яйца этих трематод выделяются с фекалиями, желательно в воду. Многие водоплавающие птицы заражаются, поедая зараженную пресноводную рыбу. Метацеркарии находятся прямо под кожей или в мышцах.Жизненный цикл этой «желтой личинки» состоит из двух промежуточных хозяев и одного окончательного хозяина. Яйца паразита вылупляются в воде, а мирацидий проникает в лапки улиток. Церкарии покидают улитку и инцистируются в мышцах соединительной ткани пресноводных видов. Образовавшаяся метацеркарная стадия называется «желтой личинкой». Инцистированный метацеркарий выглядит как желтое пятно слегка овальной формы длиной от 3 до 6 мм.Метацеркарии обычны в хвостовом, спинном и грудном плавниках; на внутренней поверхности жаберной крышки и в мякоти. Взрослые трематоды обнаруживаются во рту и пищеводе цапель и других рыбоядных птиц.
    Узнать больше
    Heterosporis часто называют паразитом желтого окуня) Мышцы (филе) зараженной рыбы выглядят белыми и непрозрачными, как будто рыба уже была приготовлена ​​или переохлаждена.Жизненный цикл паразита до конца не выработан, но споры паразита развиваются в мышечных клетках и вызывают дегенерацию мышечной ткани. До сих пор биологи-рыболовы не зафиксировали снижения численности желтого окуня в озерах, где присутствует Heterosporis.
    Узнать больше
    Вирус вирусной геморрагической септицемии может поражать различные виды рыб.В настоящее время насчитывается 25 восприимчивых видов. У инфицированных рыб происходит кровоизлияние во внутренние органы, кожу и мышцы. Некоторые рыбы не проявляют никаких внешних симптомов, но у других проявляются признаки инфекции, которые включают выпученные глаза, вздутие живота, красноватые оттенки глаз, кожи, жабр и плавников. У некоторых зараженных рыб есть открытые язвы, которые могут выглядеть как поражения от других болезней или от нападения миноги.Возможна также нервная форма заболевания, при которой рыбы постоянно мигают и демонстрируют ненормальное поведение.
    Узнать больше

    Щука кусает червей? Руководство по ловле щуки на червей

    Живая наживка, такая как дождевые черви и ползуны, является одной из самых популярных и эффективных приманок, которые можно использовать для ловли различных видов пресноводных рыб.

    Почти любая пресноводная рыба съест червя, однако некоторые виды рыб, такие как представители семейства щук, представляют собой большую проблему, когда дело доходит до укуса червя, и их можно и редко удается поймать на них.

    Так щука клюет на червя? Щука редко кусает червей, потому что черви не являются жизнеспособным источником пищи в районах, где обитают щуки. Щука с большей вероятностью клюнет на искусственные приманки и другую живую рыбу, такую ​​как желтый окунь, синежаберная и солнечная рыба, лососи, сельдь и сельдь, фингал и радужную форель, если вы насадите их на червя.

    Продолжайте читать, чтобы узнать больше о том, какие виды рыб вы будете ловить на червей, как оснастить червя и на какую наживку действительно клюнет щука.

    Какая рыба клюет на червей?

    Почти все пресноводные промысловые рыбы и живцы в Северной Америке клюют дождевых червей и ночных ползучих рыб. Это потому, что они вызывают естественное раскачивание, которое эффективно привлекает рыбу.

    Некоторые виды гораздо чаще кусают червей, чем другие, такие как голубоглазые, форель, голавли, присоски, панфиш, фингал, сом, полосатый окунь, сельдь, пресноводный барабан, судак и бычки.

    Другие виды, такие как щука, мускус, цепной окунь, взрослый большеротый окунь и карп, не интересуются червями.

    Ночные ползучие черви — более крепкий вид дождевых червей. Как правило, те же виды, которые кусают червей, кусают и ночных ползучих.

    Поскольку ползучие крупнее дождевых червей, не рекомендуется насаживать на крючок целого ползуна при ловле более мелкой рыбы, такой как форель, окунь, голубоглазый и сосунки.

    Лучше отламывать кусочки ползуна, так как это облегчит поклевку рыбы, сократит количество отходов и обойдется вам дешевле, позволит ползунам пройти дальше при забросе, повысит ваши шансы получить более крепкую посадку , и не дать рыбе украсть вашу наживку.

    Можно ли ловить рыбу на мертвых червей?

    Настоятельно рекомендуется избегать использования мертвых червей в качестве приманки, если у вас нет выбора. Это связано с тем, что мертвые черви не очень привлекательны для большинства рыб, поскольку они не обладают таким же извивающимся действием, как живые черви, поэтому они не привлекут внимание рыбы.

    Если черви только что умерли и их тело все еще в хорошем состоянии, то они все еще могут быть пригодны для ловли рыбы, особенно в ручьях, где рыба движется с большой скоростью.

    Однако, если черви завянут или высохнут от воздействия тепла, то они будут совершенно неэффективны в качестве приманки, потому что будут иметь крайне неприятный запах, отпугивающий рыбу. Они также будут очень ломкими и быстро распадутся, когда вы попытаетесь насадить их на крючок.

    Итак, если у вас нет другого выбора, кроме как ловить рыбу на мертвого червя, всегда выбирайте самых здоровых на вид червей.

    Как насадить червей на крючок?

    Насадка червей на крючок — очень простой процесс, но сначала вам нужно убедиться, что размер крючка подходит для вида, на который вы охотитесь.

    Вот шаги, которые необходимо выполнить, чтобы зацепить червя:

    • Привяжите крючок к леске узлом клинч или четверным узлом сверху.
    • Убедитесь, что узел затянут, потянув за крючок, чтобы он не проскользнул через ушко крючка.
    • Отрежьте конец лески от узла.
    • Возьмите здорового червя или ночного ползуна из контейнера. Если вы нацеливаетесь на более мелкую рыбу, вам нужно отломать некоторые части ночного ползуна.
    • Несколько раз проткните червя или ночного ползуна острием крючка, чтобы сделать отверстия, через которые будет выделяться привлекающий рыбу запах. Также рекомендуется оставлять голову или хвост червя свободно свисающими с крючка, чтобы создать извивающееся действие, которое привлечет внимание рыбы.
    • Прикрепите свинцовый груз для дроби на высоте примерно 4-8 дюймов над наживкой. Это позволит вашей приманке утонуть и затонуть в сильном течении. Это также позволит вам увеличить дальность заброса.
    • Вы ​​также можете прикрепить поплавок или поплавок-индикатор поклевки для обнаружения малозаметных поклевок.
    • Забрасывайте крючки с наживкой в ​​местах водоемов, где, как известно, обитает рыба, на которую вы охотитесь.

    Вот простое видео, которое хорошо это показывает:

    На какую наживку клюнет щука?

    Как упоминалось ранее, щуки чаще клюют на искусственные приманки, которые могут имитировать настоящую рыбу, чем на настоящую живую рыбу.

    При выборе приманки на щуку в первую очередь нужно учитывать водные условия, в которых вы собираетесь ловить.

    Если вы ловите рыбу на мелководье, рекомендуется использовать поверхностные приманки. Они могут имитировать мышей и крыс, что доказало свою эффективность при ловле щуки.

    Если вы ловите рыбу в холодных водах, рекомендуется использовать тяжелые пластмассовые приманки и воблеры, которые легко тонут, потому что щука, как правило, перемещается в более глубокие участки воды, когда температура становится ниже.

    Кроме того, движение, создаваемое краем приманки, может быть эффективным для поклевки щуки при троллинге или забросе и проводке, а пластиковые приманки могут имитировать наживку или корм в определенной области.

    Если вы ловите рыбу в мутной мутной воде, рекомендуется использовать блесны и блесны.

    Блесны и блесны не имитируют напрямую какой-либо конкретный вид наживки или корма, однако они производят вибрации и движения, которые часто эффективно вызывают реакцию у щуки и заставляют ее клюнуть сильнее.

    Имейте в виду, что сила вибрации, создаваемая этими приманками, может варьироваться в зависимости от их размера и формы. Поэтому рекомендуется поэкспериментировать с разными моделями, чтобы увидеть, какая из них лучше всего подходит для вашей ситуации.

    Если вам нужны наилучшие шансы на успех, ознакомьтесь с моим руководством по лучшим наживкам для щуки здесь.

    Похожие вопросы

    Можно ли ловить щуку на мертвую наживку?

    Щука может время от времени кусать мертвую наживку, если она очень голодна и если мертвая наживка настроена так, чтобы казаться живой и здоровой. Это потому, что щука — хищник из засады, а не падальщик, и этот инстинкт хищника, который у них есть, потребует живую здоровую пищу.

    Чем питается щука?

    Известно, что щука является оппортунистическим кормильцем.Хотя они обычно не привередливы в еде, они предпочитают более мелкую рыбу, включая желтого окуня, синежаберную и солнечную рыбу, лососей, сельдь и сельдь, фингалов и радужную форель. Они также едят ракообразных, таких как раки, земноводных, таких как лягушки, а иногда даже птиц и млекопитающих.

    Где найти щуку?

    В основном щуку можно найти в ручьях, пресной воде и зарослях почти во всех штатах северной части США.Вермонт считается лучшим местом для ловли щуки во всем регионе. Нью-Йорк также является отличным штатом для ловли щуки, как и Мичиган, Миннесота и Висконсин.

    Нужен ли поводок при ловле щуки?

    Да, при ловле щуки вам понадобится поводок. Это связано с тем, что у щуки очень острые зубы, они могут прокусить монолеску или плетенку. Таким образом, используя поводок, вы снизите риск повреждения основной лески и потери улова.Рекомендуется выбирать поводок из флюорокарбона весом 15-30 фунтов или тяжелее.

    Полезные ресурсы 

    Ловля щуки: практика увлечения от Мика Брауна (вы также можете ознакомиться с ней на Amazon здесь)

    Начало работы с ловлей щуки

    можете найти кнопки «Поделиться» ниже. Будем очень признательны ❤️

    Новый рыбный паразит распространяется на судака, северной щуки

    Рыбный паразит, впервые обнаруженный у желтого окуня, начал проявляться и у других видов.Должностные лица Министерства природных ресурсов Миннесоты заявили, что паразит под названием Hetersporis был подтвержден в пяти озерах и зарегистрирован в 25 озерах, в основном у желтого окуня, а также у одного судака и одной северной щуки.

    Паразит был обнаружен в 1999 году в озере Пиявка в Миннесоте и цепи озер Игл в Висконсине. Микроскопический организм превращает рыбное филе в непрозрачно-белый цвет, и его можно увидеть только тогда, когда рыба разделана на филе. Здоровое филе полупрозрачно.

    Поскольку паразит настолько новый, официальные лица пока не могут сказать, опасен ли он для рыб или водных экосистем.Представители органов здравоохранения Центра по контролю за заболеваниями в Атланте, штат Джорджия, заявили, что паразит не представляет опасности для здоровья человека.

    Паразит похож на безобидных паразитов, обычно встречающихся у окуня и других видов рыб, сказал Джо Марсино, руководитель лаборатории патологии DNR в Миннесоте. Однако, похоже, он относится к роду Hetersporis, паразиту, о котором сообщалось только у рыб из Германии, Франции, Японии и Тайваня. До 1999 года не было известно, что паразит когда-либо был в водах Северной Америки.Неизвестно, является ли этот паразит экзотическим видом или он произрастает в Северной Америке и был обнаружен совсем недавно.

    Марсино сказал, что он не знает, свидетельствует ли увеличение числа озер с рыбой, зараженной паразитом, о распространении организма или просто отражает увеличение числа сообщений от рыболовов.

    Паразит погибает, когда мясо тщательно прожаривается.

    Чтобы предотвратить распространение паразита, представители здравоохранения штата Висконсин рекомендуют выбрасывать зараженную рыбу или филе в мусор или закапывать, но не выбрасывать обратно в озеро.Марсино сказал, что рыболовы должны сливать воду из моторного, живого колодцев, трюмных и транцевых колодцев на лодочной рампе, прежде чем покинуть какое-либо озеро. Рыболовы должны избавляться от любых нежелательных пескарей и пиявок, а также от воды, в которой они находятся, на берегу.

    «В принципе, рыболовы должны следовать тем же процедурам, которые DNR рекомендует для предотвращения распространения любых водных экзотических видов», — сказал Марсино.

    Чтобы узнать больше об ареале этого паразита в Миннесоте, Марсино призывает рыболовов звонить или отправлять ему электронные письма, если филе окуня, судака, судака или северной щуки имеют непрозрачные белые участки.С ним можно связаться по телефону (651) 296-3043 или по электронной почте [email protected]

    Озера, в которых были зарегистрированы рыбы, содержащие паразита, включают озеро Милле-Лакс в графстве Исанти; Озеро Вермиллион в округе Сент-Луис; Озеро Пиявки в округе Касс; Озеро Андрусия в графстве Бельтрами, а также озера Хорсхед и Клитерал в графстве Оттер-Тейл.

    Красная язва — болезнь семейства щучьих/Том Розич | Новости, Спорт, Работа

    Глядя из окон нашей коллективной Медной страны на горы снега и танцующие сугробы, трудно поверить, что до весны осталась всего неделя.Откуда этот хитрый сурок, Панксатонский Фил, знал, что Полярный вихрь вернется? Возможно, у него есть горячая линия с матерью-природой.

    Хватит об этом, давайте подумаем о весенней рыбалке и рыбалке в открытой воде. Многие местные рыболовы, особенно Walleye Whisperer, с нетерпением ждут открытия сезона судака и щуки в субботу, 26 апреля, и есть вероятность, что некоторые из них поймают рыбу с паразитами или болезнью. Большинство болезней не сразу бросаются в глаза и не распознаются рыболовами, однако одна из них хорошо заметна.

    Одним из часто наблюдаемых заболеваний северной щуки и мускусной мускусной щуки является «красная язва». Он характерен для популяций северной щуки и мускусной щуки в Северной Америке и Европе, где он наблюдается уже более 100 лет. Как ни странно, на цепняка, еще одного члена семьи, это не влияет. Вероятно, это связано с тем, что щука является более южным видом и встречается в более теплой воде, а красная болячка встречается в более прохладной воде. Эта болезнь взрослых эзоцидов (семейство щук/мускусных) может достигать уровня заражения одной из каждых шести щук, но обычно он намного ниже.В некоторых озерах он достиг масштабов эпидемии и вызвал значительную смертность.

    Красная язва — это опухолевое состояние, которое обычно появляется на голове, боках или плавниках и варьирует от красных пятен до розовых/красных открытых опухолей (язв). в результате открытая язва. Эти опухоли правильнее называть лимфосаркомой. Чаще всего это наблюдается весной во время и после нереста щуки или мускусного карася.Научные исследования показывают, что это заболевание представляет собой контактный вирус, передающийся от рыбы к рыбе во время нереста. На поздних стадиях опухоли могут достигать трех-четырех дюймов в диаметре и могут приводить к летальному исходу. Если кто-то хочет посмотреть на примеры этих опухолей, зайдите в поисковую систему и найдите Red Sore.

    Эти опухоли вызываются встречающимся в природе вирусом типа С, специфичным для хладнокровных организмов, поэтому они не могут передаваться человеку. В то или иное время сообщалось о появлении красной язвы во всех водоемах Мичигана, где водится щука/мускусная охота.На самом деле это заболевание встречается во всем северном полушарии и широко распространено в Соединенных Штатах и ​​Канаде. Не существует известного метода профилактики.

    Неизвестно, что это заболевание заразно для других животных или человека, однако зараженная рыба эстетически не приятна для глаз, и употребление в пищу не рекомендуется. Если вы решите съесть рыбу, отрежьте зараженные части. Рекомендуемая утилизация — закапывание. Никогда не опускайте зараженных животных обратно в воду. Удаление зараженной рыбы вряд ли окажет какое-либо ощутимое влияние на заболеваемость или распространенность болезни в водоеме.

    Рыбачьте!

    Последние новости дня и многое другое в вашем почтовом ящике

    .

    Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован.